| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-39页 |
| 1.1 心肌组织工程在心脏缺损疾病治疗中的应用 | 第14-18页 |
| 1.1.1 心肌组织工程 | 第14-15页 |
| 1.1.2 心肌组织工程用生物材料 | 第15-18页 |
| 1.1.2.1 海藻酸钠 | 第15-16页 |
| 1.1.2.2 明胶 | 第16-17页 |
| 1.1.2.3 壳聚糖 | 第17页 |
| 1.1.2.4 心肌组织工程用生物材料的发展趋势 | 第17-18页 |
| 1.2 导电聚合物材料 | 第18-25页 |
| 1.2.1 电子型有机导电聚合物简介 | 第18-19页 |
| 1.2.2 生物医用导电高分子 | 第19-25页 |
| 1.2.2.1 聚苯胺 | 第19-21页 |
| 1.2.2.2 聚吡咯 | 第21-23页 |
| 1.2.2.3 聚噻吩 | 第23-25页 |
| 1.3 导电水凝胶的制备及其在组织工程中的应用 | 第25-35页 |
| 1.3.1 导电水凝胶的分类 | 第25-27页 |
| 1.3.1.1 碳纳米杂化水凝胶 | 第26-27页 |
| 1.3.1.2 导电聚合物水凝胶 | 第27页 |
| 1.3.2 导电聚合物水凝胶的制备 | 第27-35页 |
| 1.3.2.1 单组分导电水凝胶的制备 | 第27-29页 |
| 1.3.2.2 多组分导电水凝胶的制备 | 第29-35页 |
| 1.4 导电性生物材料对细胞生物学行为的调控作用 | 第35-37页 |
| 1.5 课题的提出和研究内容 | 第37-39页 |
| 第二章 聚-3-噻吩乙酸/明胶双网络水凝胶的研制及性能调控 | 第39-55页 |
| 2.1 引言 | 第39-40页 |
| 2.2 实验部分 | 第40-44页 |
| 2.2.1 实验原料和仪器 | 第40-41页 |
| 2.2.2 聚 3-噻吩乙酸的合成 | 第41页 |
| 2.2.2.1 3-噻吩乙酸甲酯的合成 | 第41页 |
| 2.2.2.2 聚 3-噻吩乙酸甲酯的制备 | 第41页 |
| 2.2.2.3 聚 3-噻吩乙酸的合成 | 第41页 |
| 2.2.3 甲基丙烯酸酰肼化明胶的制备 | 第41-42页 |
| 2.2.3.1 酰肼化明胶的制备 | 第41-42页 |
| 2.2.3.2 甲基丙烯酸化酰肼明胶（MAAG）的制备 | 第42页 |
| 2.2.4 双网络导电水凝胶的制备 | 第42页 |
| 2.2.5 核磁和红外检测 | 第42-43页 |
| 2.2.6 HEDN平衡溶胀度测定 | 第43页 |
| 2.2.7 HEDN水凝胶力学性能检测 | 第43页 |
| 2.2.8 HEDN水凝胶电学性能的测定 | 第43-44页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第44-54页 |
| 2.3.1 均一的导电双网络水凝胶的形成 | 第44-48页 |
| 2.3.2 HEDN双网络水凝胶的溶胀度 | 第48页 |
| 2.3.3 HEDN双网络水凝胶力学性能 | 第48-50页 |
| 2.3.4 HEDN双网络水凝胶电学性能 | 第50-54页 |
| 2.4 本章结论 | 第54-55页 |
| 第三章 聚-3-噻吩乙酸/明胶双网络水凝胶对BADSCs生物学行为的调控作用 | 第55-71页 |
| 3.1 引言 | 第55-56页 |
| 3.2 实验部分 | 第56-61页 |
| 3.2.1 实验原料和仪器 | 第56-58页 |
| 3.2.2 棕色脂肪来源间充质干细胞的分离与培养 | 第58页 |
| 3.2.3 吖啶橙/碘化丙锭（AO/PI）染色 | 第58页 |
| 3.2.4 BADSCs在HEDN水凝胶表面增殖活性检测 | 第58-59页 |
| 3.2.5 BrdU染色 | 第59页 |
| 3.2.6 HEDN水凝胶皮下埋植实验 | 第59页 |
| 3.2.7 电刺激实验 | 第59页 |
| 3.2.8 免疫荧光染色 | 第59-60页 |
| 3.2.9 Western blotting | 第60页 |
| 3.2.10 统计学分析 | 第60-61页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第61-70页 |
| 3.3.1 HEDN水凝胶的体外生物相容性 | 第61-63页 |
| 3.3.2 HEDN水凝胶的体内生物相容性 | 第63-65页 |
| 3.3.3 HEDN水凝胶对BADSCs向心肌细胞分化的影响 | 第65-68页 |
| 3.3.4 HEDN水凝胶对细胞Connexin 43 蛋白表达的影响 | 第68-70页 |
| 3.4 本章结论 | 第70-71页 |
| 第四章 聚 3,4-乙烯二氧噻吩/海藻酸钠粒子增强型多孔支架研制及性能调控 | 第71-86页 |
| 4.1 引言 | 第71-72页 |
| 4.2 实验部分 | 第72-75页 |
| 4.2.1 实验原料和仪器 | 第72-73页 |
| 4.2.2“一步法”制备PEDOT/海藻酸钠水凝胶 | 第73页 |
| 4.2.3 导电PEDOT/海藻酸钠多孔支架(PAMCS)的制备 | 第73页 |
| 4.2.4 PAMCS多孔支架红外表征 | 第73-74页 |
| 4.2.5 PEDOT/海藻酸钠水凝胶透射电镜观察 | 第74页 |
| 4.2.6 PEDOT/海藻酸钠水凝胶溶胀度测定 | 第74页 |
| 4.2.7 PEDOT/海藻酸钠水凝胶降解性能检测 | 第74页 |
| 4.2.8 PEDOT/海藻酸钠水凝胶力学性能测试 | 第74页 |
| 4.2.9 PEDOT/海藻酸钠水凝胶电学性能测试 | 第74-75页 |
| 4.2.10 PEDOT/海藻酸钠水凝胶对蛋白的吸附性能 | 第75页 |
| 4.2.11 扫描电镜观察多孔海绵（PAMCS）的形态 | 第75页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第75-85页 |
| 4.3.1 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的制备及化学结构的表征 | 第75-78页 |
| 4.3.2 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的溶胀性能 | 第78-79页 |
| 4.3.3 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的力学性能 | 第79-80页 |
| 4.3.4 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的降解性能 | 第80-81页 |
| 4.3.5 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的电化学性能 | 第81-83页 |
| 4.3.6 PEDOT/海藻酸钠水凝胶的蛋白吸附能力 | 第83-84页 |
| 4.3.7 PAMCS多孔支架的空间结构 | 第84-85页 |
| 4.4 本章结论 | 第85-86页 |
| 第五章 基于聚 3,4-乙烯二氧噻吩/海藻酸钠多孔支架的工程化心肌组织构建 | 第86-96页 |
| 5.1 引言 | 第86页 |
| 5.2 实验部分 | 第86-89页 |
| 5.2.1 实验原料和仪器 | 第86页 |
| 5.2.2 棕色脂肪来源间充质干细胞的分离 | 第86页 |
| 5.2.3 Alamar Blue测试 | 第86-87页 |
| 5.2.4 BADSCs在支架材料内部的粘附和分布情况 | 第87页 |
| 5.2.5 BADSCs在支架中的激光共聚焦显微镜观察 | 第87-88页 |
| 5.2.6 BADSCs在支架中的扫描电镜观察 | 第88页 |
| 5.2.7 BADSCs在支架中免疫荧光染色 | 第88页 |
| 5.2.8 统计学分析 | 第88-89页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第89-95页 |
| 5.3.1 BADSCs在PAMCS中的增殖行为 | 第89页 |
| 5.3.2 BADSCs在PAMCS中的分布 | 第89-92页 |
| 5.3.3 PAMCS对BADSCs心肌分化的调控作用 | 第92-94页 |
| 5.3.4 PAMCS对Connexin 43 表达的促进作用 | 第94-95页 |
| 5.4 本章结论 | 第95-96页 |
| 第六章 结论与展望 | 第96-99页 |
| 6.1 结论 | 第96-97页 |
| 6.2 创新点 | 第97页 |
| 6.3 实验中的不足以及对后续工作建议 | 第97-99页 |
| 参考文献 | 第99-117页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第117-118页 |
| 致谢 | 第118-119页 |
