| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩写和符号清单 | 第12-13页 |
| 1 引言 | 第13-14页 |
| 2 文献综述 | 第14-32页 |
| 2.1 水体嗅味污染现状 | 第14-17页 |
| 2.1.1 水体嗅味污染事件 | 第14-15页 |
| 2.1.2 常见嗅味物质及其来源 | 第15-17页 |
| 2.2 嗅味物质的感官评价指标 | 第17-18页 |
| 2.2.1 阈值浓度检测与评价方法 | 第17页 |
| 2.2.2 嗅味强度检测与评价方法 | 第17-18页 |
| 2.3 嗅味物质检测技术与方法 | 第18-21页 |
| 2.3.1 固相微萃取法 | 第18-19页 |
| 2.3.2 液液萃取法 | 第19页 |
| 2.3.3 吹扫—捕集法 | 第19-21页 |
| 2.3.4 比色法 | 第21页 |
| 2.3.5 酶联免疫吸收法 | 第21页 |
| 2.4 饮用水中嗅味的去除技术 | 第21-28页 |
| 2.4.1 化学氧化技术 | 第22-25页 |
| 2.4.2 活性炭等吸附技术 | 第25-26页 |
| 2.4.3 生物预氧化技术 | 第26-27页 |
| 2.4.4 膜分离技术 | 第27-28页 |
| 2.5 2-MIB生物降解去除的研究进展 | 第28-30页 |
| 2.5.1 降解2-MIB的菌种 | 第28-29页 |
| 2.5.2 生物降解2-MIB的原理 | 第29-30页 |
| 2.5.3 生物降解2-MIB的途径 | 第30页 |
| 2.6 研究目的和意义 | 第30-32页 |
| 3 研究内容及方法 | 第32-41页 |
| 3.1 2-MIB测定方法 | 第32页 |
| 3.2 2-MIB降解菌的筛选方法 | 第32-33页 |
| 3.2.1 降解菌的驯化 | 第32-33页 |
| 3.2.2 降解菌的分离纯化 | 第33页 |
| 3.3 2-MIB降解菌的鉴定 | 第33-36页 |
| 3.3.1 药品及试剂 | 第33页 |
| 3.3.2 仪器设备 | 第33-34页 |
| 3.3.3 降解菌DNA的提取 | 第34-35页 |
| 3.3.4 PCR扩增 | 第35页 |
| 3.3.5 基因测序 | 第35-36页 |
| 3.4 影响降解2-MIB因素的研究 | 第36-37页 |
| 3.5 2-MIB降解酶的分离纯化 | 第37-40页 |
| 3.5.1 粗酶的提取 | 第37页 |
| 3.5.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第37-38页 |
| 3.5.3 色谱柱层析 | 第38-39页 |
| 3.5.4 SDS-PAGE蛋白处理 | 第39-40页 |
| 3.6 技术路线 | 第40-41页 |
| 4 2-MIB的测定方法构建 | 第41-58页 |
| 4.1 顶空固相微萃取 | 第41-49页 |
| 4.1.1 萃取纤维的选择 | 第42-43页 |
| 4.1.2 萃取纤维的老化 | 第43页 |
| 4.1.3 萃取温度的影响 | 第43-45页 |
| 4.1.4 萃取时间的影响 | 第45页 |
| 4.1.5 离子强度的影响 | 第45-46页 |
| 4.1.6 样品量的影响 | 第46-47页 |
| 4.1.7 搅拌速率的影响 | 第47-48页 |
| 4.1.8 解吸时间的影响 | 第48页 |
| 4.1.9 解吸温度的影响 | 第48-49页 |
| 4.2 测定条件的优化 | 第49-53页 |
| 4.2.1 色谱柱的选择 | 第50页 |
| 4.2.2 初始柱温的确定 | 第50页 |
| 4.2.3 升温程序的确定 | 第50-51页 |
| 4.2.4 目标物特征离子的选择 | 第51-53页 |
| 4.3 方法验证 | 第53-55页 |
| 4.3.1 标准曲线 | 第53页 |
| 4.3.2 检出限 | 第53-54页 |
| 4.3.3 精密度 | 第54-55页 |
| 4.4 实际水样分析 | 第55页 |
| 4.5 实验结果对比分析 | 第55-56页 |
| 4.6 小结 | 第56-58页 |
| 5 2-MIB降解菌的驯化及筛选 | 第58-67页 |
| 5.1 降解菌的驯化及筛选 | 第58-60页 |
| 5.2 降解菌的鉴定 | 第60-63页 |
| 5.3 不同降解菌对2-MIB降解效率的对比 | 第63-64页 |
| 5.4 降解菌的保存与传代 | 第64-65页 |
| 5.5 小结 | 第65-67页 |
| 6 影响2-MIB降解因素的分析 | 第67-84页 |
| 6.1 菌种生长因素的影响 | 第67-73页 |
| 6.1.1 pH值的影响 | 第67-68页 |
| 6.1.2 温度的影响 | 第68-70页 |
| 6.1.3 2-MIB初始浓度的影响 | 第70-71页 |
| 6.1.4 菌种投加量的影响 | 第71-73页 |
| 6.2 外加碳源的影响 | 第73-77页 |
| 6.2.1 不同碳源的影响 | 第73-75页 |
| 6.2.2 不同浓度外加碳源的影响 | 第75-76页 |
| 6.2.3 酵母提取物的影响 | 第76-77页 |
| 6.3 混合菌种的影响 | 第77-82页 |
| 6.3.1 混合菌种的生长曲线 | 第77-80页 |
| 6.3.2 其他菌种对B.idriensis的影响 | 第80-82页 |
| 6.4 小结 | 第82-84页 |
| 7 2-MIB生物降解反应动力学研究 | 第84-96页 |
| 7.1 高浓度2-MIB中菌种生长周期及降解过程 | 第84-87页 |
| 7.2 无机盐培养基中菌种的降解动力学研究 | 第87-90页 |
| 7.3 河水水样中菌种的降解动力学 | 第90-95页 |
| 7.3.1 降解菌在河水中的生长曲线及降解过程 | 第90-93页 |
| 7.3.2 降解菌在河水中的降解动力学 | 第93-95页 |
| 7.4 小结 | 第95-96页 |
| 8 降解菌对2-MIB降解机理的研究 | 第96-116页 |
| 8.1 2-MIB生物降解产物研究 | 第96-100页 |
| 8.2 2-MIB降解酶的分离纯化 | 第100-105页 |
| 8.2.1 粗酶的提取 | 第100-101页 |
| 8.2.2 色谱柱层析分离降解酶 | 第101-105页 |
| 8.3 2-MIB降解酶的一级结构及二级结构预测 | 第105-115页 |
| 8.3.1 降解酶的分离及鉴定 | 第105-113页 |
| 8.3.2 降解酶的结构预测 | 第113-115页 |
| 8.4 小结 | 第115-116页 |
| 9 结论与建议 | 第116-119页 |
| 9.1 结论 | 第116-117页 |
| 9.2 创新点 | 第117页 |
| 9.3 建议 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-129页 |
| 附录A 四种降解菌的基因测序结果 | 第129-133页 |
| 作者简历及在学研究成果 | 第133-136页 |
| 学位论文数据集 | 第136页 |