| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-29页 |
| 1. 肥胖的概念及危害 | 第13-14页 |
| ·什么叫肥胖 | 第13页 |
| ·肥胖的危害 | 第13-14页 |
| 2. 肥胖的成因,脂肪细胞的发生和脂肪组织的类型及分布 | 第14-18页 |
| ·肥胖的成因 | 第14页 |
| ·脂肪细胞的发生 | 第14-15页 |
| ·脂肪组织的类型及分布 | 第15-18页 |
| ·白色脂肪组织 | 第16-17页 |
| ·棕色脂肪组织 | 第17-18页 |
| ·米色脂肪组织 | 第18页 |
| 3. 脂肪代谢相关通路 | 第18-26页 |
| ·前脂肪细胞分化相关信号通路 | 第19-22页 |
| ·转录因子相互调控机制 | 第19-20页 |
| ·丝裂原活化蛋白激酶信号通路 | 第20-22页 |
| ·AMPK信号通路 | 第22页 |
| ·其他与脂肪生成相关的细胞信号通路 | 第22页 |
| ·成熟脂肪细胞脂解相关信号通路 | 第22-25页 |
| ·cAMP-PKA调控脂解代谢通路 | 第23-24页 |
| ·PI3K-Akt调控脂解代谢通路 | 第24页 |
| ·AMPK调控脂解代谢通路 | 第24-25页 |
| ·PPARγ相关调控脂解代谢通路 | 第25页 |
| ·调控非酒精性脂肪肝(NAFLD)的重要靶点 | 第25-26页 |
| 4. 沙棘籽黄酮(FSH)对糖、脂代谢影响的研究现状 | 第26-27页 |
| 5. 本课题的研究目的和意义 | 第27-29页 |
| 第二章 沙棘籽黄酮对高脂饮食诱导的肥胖小鼠的糖、脂代谢的调控 | 第29-51页 |
| 1. 前言 | 第29页 |
| 2. 实验材料 | 第29-32页 |
| ·实验动物及饲料 | 第29-30页 |
| ·实验药品、试剂 | 第30-31页 |
| ·实验仪器 | 第31-32页 |
| 3. 实验方法 | 第32-38页 |
| ·主要试剂配制 | 第32-33页 |
| ·沙棘籽黄酮(FSH)的提取 | 第33页 |
| ·FSH纯度测定 | 第33-34页 |
| ·FSH中黄酮苷元的测定 | 第34页 |
| ·C57BL/6J雄鼠分组、造模及给药 | 第34-35页 |
| ·口服葡萄糖耐量实验 | 第35页 |
| ·小鼠处死、血液样本及组织处理和匀浆制备 | 第35页 |
| ·生化指标测定 | 第35-36页 |
| ·组织切片、苏木精-伊红染色以及免疫组化 | 第36页 |
| ·荧光实时定量聚合酶链式反应过程 | 第36-37页 |
| ·免疫印迹实验过程 | 第37-38页 |
| ·统计学分析 | 第38页 |
| 4. 结果与讨论 | 第38-48页 |
| ·FSH的纯度 | 第38-39页 |
| ·FSH黄酮苷元的含量测定 | 第39页 |
| ·FSH对肥胖小鼠体重、摄食量及腹腔脂肪组织的影响 | 第39-41页 |
| ·FSH对肥胖小鼠脏器系数的影响 | 第41页 |
| ·FSH对肥胖小鼠口服糖耐量实验的影响 | 第41-42页 |
| ·FSH对肥胖小鼠生化指标的影响 | 第42-43页 |
| ·肝脏、附睾脂肪组织切片分析 | 第43-45页 |
| ·FSH对肥胖小鼠肝脏、白色脂肪组织mRNA的影响 | 第45-47页 |
| ·FSH对肥胖小鼠肝脏、白色脂肪组织PPARγ的影响 | 第47-48页 |
| 5. 本章小结 | 第48-51页 |
| 第三章 沙棘籽黄酮及其中两种单体对3T3-L1脂肪细胞脂肪分解的调控及机理探究 | 第51-83页 |
| 1. 前言 | 第51-52页 |
| 2. 实验材料 | 第52-54页 |
| ·实验药品、试剂 | 第52-53页 |
| ·实验细胞株 | 第53页 |
| ·实验仪器 | 第53-54页 |
| 3. 实验方法 | 第54-60页 |
| ·主要试剂配制 | 第54-55页 |
| ·药物的预处理 | 第55-56页 |
| ·3T3-L1前脂肪细胞诱导分化步骤 | 第56页 |
| ·SRB实验 | 第56-57页 |
| ·油红O染色 | 第57页 |
| ·甘油、甘油三酯含量测定 | 第57-58页 |
| ·荧光实时定量聚合酶链式反应过程 | 第58-59页 |
| ·免疫印迹实验过程 | 第59-60页 |
| ·统计学分析 | 第60页 |
| 4. 结果与讨论 | 第60-81页 |
| ·FSH、异鼠李素和山奈酚对3T3-L1成熟脂肪细胞的毒性影响 | 第60-62页 |
| ·FSH抑制3T3-L1脂肪细胞基础水平脂肪分解 | 第62-63页 |
| ·FSH对脂肪分解相关酶系、转录因子mRNA分子和相关蛋白的影响 | 第63-65页 |
| ·异鼠李素、山奈酚促进3T3-L1脂肪细胞基础水平的脂肪分解 | 第65-66页 |
| ·异鼠李素和山奈酚抑制异丙肾上腺素或毛喉素刺激下的3T3-L1脂肪细胞的脂肪分解 | 第66-68页 |
| ·异鼠李素和山奈酚对脂肪细胞基础脂解状态下脂解相关酶系和转录因子的影响 | 第68-70页 |
| ·异鼠李素和山奈酚降低3T3-L1脂肪细胞内源TNFα合成 | 第70-74页 |
| ·异鼠李素和山奈酚通过激活cAMP-PKA信号通路来促进脂肪分解 | 第74-75页 |
| ·异鼠李素和山奈酚促进ERK蛋白的磷酸化 | 第75-77页 |
| ·沙棘籽黄酮糖苷与苷元在调控脂肪代谢方面具有差异 | 第77-81页 |
| 5. 本章小结 | 第81-83页 |
| 第四章 沙棘籽黄酮及其中两种单体对HL7702细胞NAFLD模型中脂肪代谢的调控及机理初探 | 第83-99页 |
| 1. 前言 | 第83-84页 |
| 2. 实验材料 | 第84-86页 |
| ·实验药品、试剂 | 第84-86页 |
| ·实验细胞株 | 第86页 |
| ·实验仪器 | 第86页 |
| 3. 实验方法 | 第86-88页 |
| ·主要试剂配制 | 第86页 |
| ·药物的预处理 | 第86页 |
| ·HL7702诱导分化NAFLD模型步骤 | 第86-87页 |
| ·细胞毒理实验 | 第87-88页 |
| ·油红O染色 | 第88页 |
| ·甘油测定 | 第88页 |
| ·荧光实时定量聚合酶链式反应过程 | 第88页 |
| ·免疫印迹实验过程 | 第88页 |
| ·统计学分析 | 第88页 |
| 4. 结果与讨论 | 第88-96页 |
| ·FSH、异鼠李素和山奈酚对HL7702肝细胞的毒性影响 | 第88-89页 |
| ·FSH、异鼠李素和山奈酚对油酸钠诱导的NAFLD过程的影响 | 第89-91页 |
| ·FSH、异鼠李素和山奈酚对油酸钠诱导的NAFLD过程的相关转录因子的调控作用 | 第91-93页 |
| ·FSH、异鼠李素和山奈酚对油酸钠诱导的NAFLD过程的能量相关信号的调控作用 | 第93-94页 |
| ·FSH、异鼠李素和山奈酚对NAFLD模型脂解相关转录因子、能量相关信号的调控作用 | 第94-96页 |
| 5. 本章小结 | 第96-99页 |
| 全文总结 | 第99-103页 |
| 本论文的主要研究内容及重要发现 | 第99-101页 |
| 本论文的创新点 | 第101页 |
| 展望 | 第101-103页 |
| 参考文献 | 第103-111页 |
| 附录Ⅰ 缩略词对照表 | 第111-115页 |
| 附录Ⅱ 引物序列表 | 第115-117页 |
| 附录Ⅲ 硕士期间学术成果 | 第117-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
