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AP0E-/-小鼠TLR9介导巨噬细胞极化效应对动脉粥样硬化作用的研究

英文缩略词表第1-6页
中文摘要第6-8页
Abstract第8-10页
前言第10-11页
1 材料与方法第11-24页
   ·实验细胞和动物第11页
   ·实验设备第11-12页
   ·实验主要试剂第12-13页
   ·细胞培养分组及处理第13页
   ·实验动物分组及处理第13-14页
   ·Western blotting检测RAW264.7 细胞各组的TLR9蛋白含量第14-15页
   ·Western blotting检测斑块TLR9及其下游分子的蛋白表达第15-16页
   ·巨噬细胞表型的检测第16-17页
   ·巨噬细胞相关炎症因子的检测第17-21页
   ·主动脉根部油红O染色第21-22页
   ·主动脉大体油红染色第22页
   ·苦味酸天狼猩红染色第22页
   ·免疫组化染色第22-23页
   ·统计学分析第23-24页
2 结果第24-32页
   ·TLR9及其下游信号分子通路的蛋白表达情况第24-26页
     ·RAW264.7 细胞TLR9蛋白表达水平的变化第24页
     ·ApoE~(?/?)小鼠抑制TLR9后对斑块TLR9蛋白表达的影响第24-25页
     ·ApoE~(?/?)小鼠抑制TLR9后对斑块TLR9下游分子蛋白表达的影响第25-26页
   ·巨噬细胞极化状态的改变第26-29页
     ·RAW264.7 细胞通过流式细胞术检测巨噬细胞(M1/M2型)的比例第26页
     ·RAW264.7 细胞用免疫荧光双标化学染色检测iNOS和CD206蛋白的表达第26-28页
     ·ApoE~(?/?) 小鼠通过免疫荧光检测主动脉斑块巨噬细胞表型的改变第28-29页
   ·巨噬细胞(M1/M2)相关炎症因子的变化第29-30页
     ·RAW264.7 细胞用RT‐PCR法和ELISA法检测TNF‐α 的表达第29-30页
     ·ApoE~(?/?) 小鼠通过RT‐PCR检测各组动脉斑块巨噬细胞(M1 /M2型)相关炎症因子mRNA的表达第30页
   ·抑制TLR9以后对动脉斑块面积及其易损性的影响第30-32页
     ·通过油红O染色检测动脉斑块面积的变化第30-31页
     ·抑制TLR9后对ApoE~(?/?) 小鼠动脉斑块易损性的影响第31-32页
3 讨论第32-35页
4 结论第35-36页
参考文献第36-39页
综述第39-48页
 参考文献第44-48页
致谢第48页

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