英文缩略词表 | 第1-6页 |
中文摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
前言 | 第10-11页 |
1 材料与方法 | 第11-24页 |
·实验细胞和动物 | 第11页 |
·实验设备 | 第11-12页 |
·实验主要试剂 | 第12-13页 |
·细胞培养分组及处理 | 第13页 |
·实验动物分组及处理 | 第13-14页 |
·Western blotting检测RAW264.7 细胞各组的TLR9蛋白含量 | 第14-15页 |
·Western blotting检测斑块TLR9及其下游分子的蛋白表达 | 第15-16页 |
·巨噬细胞表型的检测 | 第16-17页 |
·巨噬细胞相关炎症因子的检测 | 第17-21页 |
·主动脉根部油红O染色 | 第21-22页 |
·主动脉大体油红染色 | 第22页 |
·苦味酸天狼猩红染色 | 第22页 |
·免疫组化染色 | 第22-23页 |
·统计学分析 | 第23-24页 |
2 结果 | 第24-32页 |
·TLR9及其下游信号分子通路的蛋白表达情况 | 第24-26页 |
·RAW264.7 细胞TLR9蛋白表达水平的变化 | 第24页 |
·ApoE~(?/?)小鼠抑制TLR9后对斑块TLR9蛋白表达的影响 | 第24-25页 |
·ApoE~(?/?)小鼠抑制TLR9后对斑块TLR9下游分子蛋白表达的影响 | 第25-26页 |
·巨噬细胞极化状态的改变 | 第26-29页 |
·RAW264.7 细胞通过流式细胞术检测巨噬细胞(M1/M2型)的比例 | 第26页 |
·RAW264.7 细胞用免疫荧光双标化学染色检测iNOS和CD206蛋白的表达 | 第26-28页 |
·ApoE~(?/?) 小鼠通过免疫荧光检测主动脉斑块巨噬细胞表型的改变 | 第28-29页 |
·巨噬细胞(M1/M2)相关炎症因子的变化 | 第29-30页 |
·RAW264.7 细胞用RT‐PCR法和ELISA法检测TNF‐α 的表达 | 第29-30页 |
·ApoE~(?/?) 小鼠通过RT‐PCR检测各组动脉斑块巨噬细胞(M1 /M2型)相关炎症因子mRNA的表达 | 第30页 |
·抑制TLR9以后对动脉斑块面积及其易损性的影响 | 第30-32页 |
·通过油红O染色检测动脉斑块面积的变化 | 第30-31页 |
·抑制TLR9后对ApoE~(?/?) 小鼠动脉斑块易损性的影响 | 第31-32页 |
3 讨论 | 第32-35页 |
4 结论 | 第35-36页 |
参考文献 | 第36-39页 |
综述 | 第39-48页 |
参考文献 | 第44-48页 |
致谢 | 第48页 |