中文摘要 | 第1-10页 |
ABSTRACT | 第10-15页 |
前言 | 第15-17页 |
第一部分 间歇性低氧对氧化应激和内皮功能的影响 | 第17-53页 |
研究一 慢性间歇性低氧对大鼠氧化应激和内皮功能的影响 | 第17-39页 |
1 实验材料 | 第18-19页 |
·实验动物 | 第18页 |
·主要仪器设备 | 第18页 |
·主要实验药品及试剂 | 第18-19页 |
2 实验方法 | 第19-22页 |
·实验分组 | 第19页 |
·样本取用和制备 | 第19页 |
·各指标测定方法 | 第19-21页 |
·丙二醛(MDA)的测定 | 第19-20页 |
·超氧化物歧化酶(SOD)的测定 | 第20页 |
·总抗氧化能力(T-AOC)的测定 | 第20页 |
·一氧化氮(NO)的测定 | 第20-21页 |
·ELISA法检测内皮素(ET)的表达 | 第21页 |
·ELISA法检测血管内皮生长因子(VEGF)的表达 | 第21页 |
·数据处理 | 第21-22页 |
3 实验结果与分析 | 第22-33页 |
·慢性间歇性低氧对大鼠氧化应激系统的影响 | 第22-31页 |
·慢性间歇性低氧对血清中氧化应激指标的影响 | 第22-24页 |
·慢性间歇性低氧对心肌组织氧化应激指标的影响 | 第24-25页 |
·慢性间歇性低氧对脑组织氧化应激指标的影响 | 第25-27页 |
·慢性间歇性低氧对肝组织氧化应激指标的影响 | 第27-29页 |
·慢性间歇性低氧对肾组织氧化应激指标的影响 | 第29-31页 |
·慢性间歇性低氧对内皮功能的影响 | 第31-33页 |
4 讨论 | 第33-39页 |
·慢性间歇性低氧对大鼠氧化应激的影响 | 第33-37页 |
·慢性间歇性低氧对大鼠内皮功能的影响 | 第37-39页 |
5 小结 | 第39页 |
研究二 间歇性低氧对血管内皮细胞氧化应激和内皮功能的影响 | 第39-53页 |
1 实验材料 | 第40-41页 |
·实验动物 | 第40页 |
·主要实验仪器设备 | 第40-41页 |
·主要实验药品及试剂 | 第41页 |
2 实验方法 | 第41-45页 |
·组织贴片法分离培养大鼠主动脉血管内皮细胞 | 第41-43页 |
·大鼠主动脉血管内皮细胞的原代培养 | 第41-42页 |
·大鼠主动脉血管内皮细胞传代 | 第42页 |
·大鼠主动脉血管内皮细胞的冻存与复苏 | 第42-43页 |
·实验分组 | 第43页 |
·间歇低氧对血管内皮细胞氧化应激和内皮功能的影响 | 第43页 |
·体外模拟氧化应激对血管内皮细胞的损伤作用 | 第43页 |
·指标测定 | 第43-44页 |
·MDA、SOD、NO、ET水平的测定 | 第43-44页 |
·MTS法检测细胞存活率 | 第44页 |
·乳酸脱氢酶(LDH)的测定 | 第44页 |
·数据处理 | 第44-45页 |
3 实验结果与分析 | 第45-50页 |
·间歇性低氧对大鼠血管内皮细胞氧化应激和内皮功能的影响 | 第45-50页 |
·间歇性低氧对大鼠血管内皮细胞氧化应激的影响 | 第45-49页 |
·间歇性低氧对血管内皮细胞内皮功能的影响 | 第49-50页 |
4 讨论 | 第50-53页 |
5 小结 | 第53页 |
第二部分 胆碱抗低氧损伤的内皮细胞保护作用 | 第53-61页 |
1 实验材料 | 第54页 |
2 实验方法 | 第54-55页 |
·细胞培养 | 第54页 |
·实验分组 | 第54-55页 |
·指标测试 | 第55页 |
·MTT法检测细胞活性 | 第55页 |
·LDH和VEGF的测试 | 第55页 |
·数据处理 | 第55页 |
3.实验结果与分析 | 第55-59页 |
·胆碱的促细胞增殖及抗低氧损伤的作用 | 第55-58页 |
·胆碱的促内皮细胞增殖机制 | 第58-59页 |
4 讨论 | 第59-60页 |
5 小结 | 第60-61页 |
全文总结 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-67页 |
综述 | 第67-74页 |
参考文献 | 第73-74页 |
缩略词语表 | 第74-75页 |
致谢 | 第75-77页 |
研究生个人简历 | 第77页 |