| 符号说明 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 前言 | 第9-17页 |
| ·授粉过程中花粉与柱头相互作用的研究进展 | 第9-16页 |
| ·花粉的黏附 | 第11-13页 |
| ·花粉的水合 | 第13-14页 |
| ·花粉管的萌发及伸长 | 第14页 |
| ·花粉管在柱头和花柱中进行极性生长并到达胚珠 | 第14-16页 |
| ·本研究的目的及其意义 | 第16-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-33页 |
| ·实验材料 | 第17-19页 |
| ·植物材料及生长条件 | 第17页 |
| ·菌株和质粒 | 第17页 |
| ·各种生化试剂、培养基、酶 | 第17-19页 |
| ·PCR 引物 | 第19页 |
| ·实验方法 | 第19-33页 |
| ·拟南芥的种植与培养 | 第19页 |
| ·亚历山大染色步骤： | 第19页 |
| ·苯胺蓝染色步骤: | 第19-20页 |
| ·基因组 DNA 的提取 | 第20页 |
| ·植物总 RNA 的提取 | 第20页 |
| ·反转录 cDNA 第一链的合成 | 第20页 |
| ·Real-time PCR 分析 | 第20-21页 |
| ·构建植物转基因表达载体的一般步骤 | 第21-24页 |
| ·根癌农杆菌 GV3101 感受态细胞的制备与转化 | 第24-26页 |
| ·RNA 原位杂交 | 第26-31页 |
| ·花粉冲洗 | 第31-32页 |
| ·透射电镜技术观察花粉的超微结构 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-45页 |
| ·ungerminated pollen on stigma（ups）突变体的分析 | 第33-40页 |
| ·ups 杂合突变体自交后代中没有发现纯合体 | 第33页 |
| ·ups 杂合突变体的角果种子数与野生型类似 | 第33-34页 |
| ·ups 突变体的雄配子传递率显著下降 | 第34页 |
| ·ups 杂合突变体的花粉形态、活力、花粉体外萌发与野生型类似 | 第34-35页 |
| ·限量授粉使 ups 雄配子体传递效率上升 | 第35-37页 |
| ·ups 杂合突变体花粉在柱头上不能萌发，容易被冲洗掉 | 第37-39页 |
| ·ups 突变体花粉的超微结构观察 | 第39-40页 |
| ·UPS-amiRNAi 转基因拟南芥花粉易被冲洗掉 | 第40-41页 |
| ·UPS 的表达分析 | 第41-45页 |
| ·Real-Time PCR 分析 | 第41-42页 |
| ·UPS 表达的 GUS 染色分析 | 第42-43页 |
| ·原位杂交检测 UPS 在雄配子体发育过程中的表达 | 第43-45页 |
| 4 讨论 | 第45-48页 |
| ·UPS 在拟南芥花粉发育的不同时期表达 | 第45页 |
| ·UPS 在拟南芥雄配子体发育过程中起作用 | 第45-48页 |
| ·UPS 可能通过调节液泡渗透势影响拟南芥雄配子体的发育 | 第45-46页 |
| ·UPS 可能通过线粒体影响拟南芥雄配子体的发育 | 第46页 |
| ·UPS 突变没有获得纯合体的原因 | 第46-48页 |
| 5 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
