| 中文摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-13页 |
| 第一部分 动物多肽体外抗耐药真菌活性研究 | 第13-20页 |
| 1 实验材料和方法 | 第13-15页 |
| ·抗真菌药敏实验(Antifungal susceptibility testing) | 第13-14页 |
| ·棋盘式微量液基稀释法(Checkerboard microdilution assay) | 第14-15页 |
| 2 实验结果 | 第15-18页 |
| ·动物多肽单用时对白念珠菌的作用 | 第15-16页 |
| ·哺乳动物多肽联合氟康唑对白念珠菌的作用 | 第16-18页 |
| 3 讨论 | 第18-20页 |
| 第二部分 抗菌肽MAP28和RL4体外抗真菌活性研究 | 第20-35页 |
| 1 实验材料和方法 | 第20-24页 |
| ·抗真菌药敏实验(Antifungal susceptibility testing) | 第20页 |
| ·琼脂平皿纸片扩散实验(Agar disk diffusion test) | 第20-21页 |
| ·MFC值测定(Minimum fungicidal concentration test) | 第21-22页 |
| ·时间-杀菌曲线(Time-kill curve) | 第22-23页 |
| ·碘化丙啶荧光强度测定 | 第23页 |
| ·抗菌肽对白念珠菌菌丝形成的影响 | 第23-24页 |
| ·棋盘式微量稀释实验(Checkerboard microdilution assay) | 第24页 |
| 2 实验结果 | 第24-33页 |
| ·MAP28和RL4对白念珠菌以及非白念珠菌的体外抗真菌活性 | 第24-26页 |
| ·琼脂平皿纸片扩散实验 | 第26-27页 |
| ·MFC值测定 | 第27页 |
| ·时间-杀菌曲线 | 第27-28页 |
| ·多肽作用后耐药白念珠菌胞内的PI荧光强度的测定 | 第28-30页 |
| ·MAP28和RL4对白念珠菌菌丝形成的影响 | 第30-32页 |
| ·MAP28和RL4联合其他抗真菌药物对氟康唑耐药的白念珠菌的作用 | 第32-33页 |
| 3 讨论 | 第33-35页 |
| 第三部分 抗菌肽MAP28和RL4抗真菌作用机制研究 | 第35-50页 |
| 1 实验材料和方法 | 第35-39页 |
| ·细胞形态变化 | 第35页 |
| ·白念珠菌胞内钾离子浓度测定 | 第35-36页 |
| ·白念珠菌胞生物大分子物质的测定 | 第36页 |
| ·FITC标记多肽在耐药白念珠菌胞内定位 | 第36-37页 |
| ·细胞内活性氧ROS水平检测 | 第37-38页 |
| ·线粒体膜电位(ΔΨm)的测定 | 第38页 |
| ·白念珠菌细胞凋亡检测——Annexin V-FITC/PI双染法 | 第38-39页 |
| 2 实验结果 | 第39-47页 |
| ·MAP28和RL4对耐药白念珠菌的超微结构的影响 | 第39-40页 |
| ·MAP28和RL4对耐药白念珠菌细胞膜通透性的影响 | 第40-42页 |
| ·耐药白念珠菌细胞内钾离子浓度测定 | 第40-41页 |
| ·MAP28和RL4对耐药菌胞内生物大分子物质的影响 | 第41-42页 |
| ·MAP28和RL4对耐药白念珠菌细胞生长的影响 | 第42-47页 |
| ·FITC标记多肽在耐药白念珠菌胞内定位 | 第42-44页 |
| ·细胞内活性氧ROS水平检测 | 第44页 |
| ·线粒体膜电位(ΔΨm)的测定 | 第44-45页 |
| ·白念珠菌细胞凋亡检测——Anncxin V-FITC/PI双染法 | 第45-47页 |
| 3 讨论 | 第47-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 附录 | 第55-57页 |
| 致谢 | 第57-59页 |
| 文献综述 | 第59-66页 |
| 参考文献 | 第63-66页 |
| 作者简历 | 第66-67页 |
