摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-24页 |
·紫花苜蓿再生体系的研究进展 | 第13-14页 |
·基因型对再生的影响 | 第13页 |
·外植体对再生的影响 | 第13页 |
·基本培养基和激素配比对再生的影响 | 第13-14页 |
·胁迫诱导型启动子 SWPA2 及其功能概述 | 第14-15页 |
·启动子的类型和作用 | 第14-15页 |
·常见胁迫诱导型启动子结构及应用 | 第15页 |
·NDPK2 基因及其功能研究 | 第15-16页 |
·植物核苷二磷酸激酶(NDPKs) | 第15-16页 |
·NDPK2 的功能和应用 | 第16页 |
·紫花苜蓿转化体系的研究进展 | 第16-21页 |
·获得转基因植物常用的方法 | 第17-18页 |
·紫花苜蓿遗传转化的影响因素 | 第18-19页 |
·紫花苜蓿转入外源 DNA 类型 | 第19-21页 |
·本试验的研究目的意义及技术路线 | 第21-24页 |
·研究目的意义 | 第21-23页 |
·研究技术路线 | 第23-24页 |
第二章 紫花苜蓿再生系统的建立 | 第24-30页 |
·材料和方法 | 第24-25页 |
·试验材料 | 第24页 |
·试验使用的主要试剂 | 第24页 |
·紫花苜蓿无菌苗的获得 | 第24页 |
·愈伤组织的诱导 | 第24页 |
·愈伤组织的分化 | 第24-25页 |
·根的诱导 | 第25页 |
·再生苗繁殖、驯化移栽 | 第25页 |
·各指标的计算 | 第25页 |
·结果与分析 | 第25-28页 |
·不同基本培养基及激素配比对诱导愈伤的影响 | 第25-27页 |
·不同 KT 浓度对愈伤分化的影响 | 第27页 |
·NAA 对根诱导的影响 | 第27-28页 |
·不同培养基及激素浓度对苜蓿再生率的影响 | 第28页 |
·讨论 | 第28-30页 |
·不同的培养基对诱导愈伤及分化的影响 | 第28-29页 |
·不同的激素浓度对诱导愈伤及分化的影响 | 第29-30页 |
第三章 AtNDPK2 基因转化及转化株的分子生物学鉴定 | 第30-44页 |
·材料和方法 | 第30-34页 |
·转化使用的试验材料及载体 | 第30页 |
·使用的抗生素和培养基 | 第30-31页 |
·农杆菌菌种的活化和保存及侵染菌悬液的制备 | 第31页 |
·头孢霉素(Cef)抑菌浓度的确定 | 第31-32页 |
·Kan 浓度对下胚轴诱导愈伤,分化的影响 | 第32页 |
·Cef 浓度对下胚轴诱导愈伤,分化的影响 | 第32页 |
·预培养时间对下胚轴转化的影响 | 第32页 |
·共培养时间对下胚轴转化的影响 | 第32页 |
·脱菌及抗性体胚的筛选 | 第32-33页 |
·农杆菌介导的 AtNDPK2 基因的转化和抗性植株再生 | 第33页 |
·抗性植株的分子生物学鉴定 | 第33-34页 |
·结果与分析 | 第34-42页 |
·头孢霉素(Cef)抑菌浓度的确定 | 第34-35页 |
·Kan 对下胚轴诱导愈伤,分化的影响 | 第35-36页 |
·Cef 对下胚轴诱导愈伤,分化的影响 | 第36-37页 |
·预培养时间对下胚轴转化的影响 | 第37-38页 |
·共培养时间对下胚轴转化的影响 | 第38页 |
·抗性体胚筛选方式对转化的影响 | 第38-39页 |
·农杆菌介导的 AtNDPK2 基因的转化和抗性植株再生 | 第39-40页 |
·抗性植株的 PCR 检测 | 第40-42页 |
·讨论 | 第42-44页 |
·抗生素种类和浓度的选择 | 第42页 |
·转化过程中预培养和共培养时间的选择 | 第42-43页 |
·转化过程中筛选方式的选择 | 第43-44页 |
第四章 转基因苜蓿组培苗的盐胁迫分析 | 第44-48页 |
·材料和方法 | 第44-45页 |
·试验材料 | 第44页 |
·试验方法 | 第44-45页 |
·结果 | 第45-47页 |
·盐胁迫对转化株超氧化物歧化酶(SOD)活性的影响 | 第45页 |
·盐胁迫对转化株过氧化物酶(POD)活性的影响 | 第45-46页 |
·盐胁迫对转化株丙二醛(MDA)含量的影响 | 第46-47页 |
·讨论 | 第47-48页 |
第五章 结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-57页 |
致谢 | 第57-58页 |
附录 | 第58-60页 |
作者简历 | 第60页 |