| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-13页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 1.文献综述 | 第15-46页 |
| ·棘皮动物免疫防御机制 | 第15-21页 |
| ·体壁组织的抗菌活性 | 第15页 |
| ·细胞免疫防御 | 第15-18页 |
| ·体液免疫防御 | 第18-21页 |
| ·海参消化生理学和肠道菌群的研究 | 第21-28页 |
| ·海参消化生理研究现状 | 第21-26页 |
| ·海参肠道菌群的研究 | 第26-28页 |
| ·多糖类免疫增强剂及其在水产动物中的应用 | 第28-30页 |
| ·免疫增强剂 | 第28页 |
| ·多糖类免疫增强剂在水产动物中的应用现状 | 第28-30页 |
| ·黄芪多糖(APS)免疫调节作用的研究进展 | 第30-35页 |
| ·中药黄芪及其化学成分 | 第30页 |
| ·APS的化学成分 | 第30-31页 |
| ·APS免疫调节机制的研究现状 | 第31页 |
| ·对巨噬细胞功能的影响 | 第31-34页 |
| ·对淋巴细胞功能的影响 | 第34页 |
| ·对NK细胞的影响 | 第34页 |
| ·对细胞因子的作用 | 第34页 |
| ·对机体第二信使水平的影响 | 第34-35页 |
| ·本论文研究意义和主要工作 | 第35页 |
| 参考文献 | 第35-46页 |
| 2.黄芪多糖对刺参免疫细胞溶菌酶基因表达量和吞噬功能的影响 | 第46-70页 |
| ·前言 | 第46-47页 |
| ·实验材料及设备 | 第47-49页 |
| ·实验动物 | 第47页 |
| ·主要试剂 | 第47-48页 |
| ·主要设备 | 第48页 |
| ·分析软件 | 第48-49页 |
| ·实验方法 | 第49-56页 |
| ·β-actin基因部分片段的克隆 | 第49-53页 |
| ·半定量检测APS对刺参溶菌酶基因mRNA表达量的影响 | 第53-54页 |
| ·免疫细胞的采集 | 第54页 |
| ·细胞形态研究 | 第54页 |
| ·吞噬活性研究 | 第54-55页 |
| ·超氧阴离子(O_2~-)产生研究 | 第55页 |
| ·数据统计分析 | 第55-56页 |
| ·结果 | 第56-62页 |
| ·刺参β-actin基因片段的克隆与分析 | 第56-57页 |
| ·APS对刺参体腔细胞溶菌酶mRNA表达量的影响 | 第57页 |
| ·生理盐水对刺参体腔细胞溶菌酶mRNA表达量的影响 | 第57-58页 |
| ·细胞形态研究 | 第58-59页 |
| ·APS对吞噬细胞吞噬率的影响 | 第59页 |
| ·APS对吞噬细胞吞噬指数的影响 | 第59-62页 |
| ·APS对超氧阴离子(O_2~-)产生的影响 | 第62页 |
| ·讨论 | 第62-65页 |
| ·APS对溶菌酶基因表达的影响 | 第62-63页 |
| ·APS对吞噬细胞功能的影响 | 第63-64页 |
| ·APS免疫促进作用机理 | 第64页 |
| ·多糖类免疫增强剂免疫抑制的机理 | 第64-65页 |
| ·小结 | 第65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 3 饲喂黄芪和黄芪多糖对刺参非特异性免疫力的影响 | 第70-92页 |
| ·前言 | 第70页 |
| ·材料与设备 | 第70-72页 |
| ·实验动物 | 第70-71页 |
| ·试剂 | 第71页 |
| ·设备 | 第71-72页 |
| ·养殖装置 | 第72页 |
| ·实验方法 | 第72-75页 |
| ·饲料制备 | 第72-73页 |
| ·实验设计 | 第73页 |
| ·细胞吞噬率测定 | 第73页 |
| ·超氧阴离子测定 | 第73-74页 |
| ·血清酚氧化酶活力测定 | 第74页 |
| ·血清溶菌酶活力测定 | 第74页 |
| ·血清酸性磷酸酶(ACP)和碱性磷酸酶(ALP)活力测定 | 第74页 |
| ·血清凝集素效价测定 | 第74页 |
| ·攻毒试验 | 第74页 |
| ·数据分析 | 第74-75页 |
| ·结果 | 第75-80页 |
| ·黄芪和APS对吞噬率的影响 | 第75页 |
| ·黄芪和APS对O_2~-产生的影响 | 第75-77页 |
| ·黄芪和APS对血清酚氧化酶活力的影响 | 第77页 |
| ·黄芪和APS对血清溶菌酶活力的影响 | 第77页 |
| ·黄芪和APS对血清ACP活力的影响 | 第77-78页 |
| ·黄芪和APS对血清ALP活力的影响 | 第78页 |
| ·黄芪和APS对血清凝集素效价的影响 | 第78-80页 |
| ·黄芪和APS对刺参抗病力的影响 | 第80页 |
| ·讨论 | 第80-85页 |
| ·黄芪和APS对刺参吞噬率的影响 | 第80-81页 |
| ·黄芪和APS对刺参O_2~-产生的影响 | 第81-82页 |
| ·黄芪和APS对刺参酚氧化酶活力的影响 | 第82页 |
| ·黄芪和APS对刺参溶菌酶活力的影响 | 第82-83页 |
| ·黄芪和APS对刺参ACP和ALP活力的影响 | 第83-84页 |
| ·黄芪和APS对刺参凝集素效价的影响 | 第84页 |
| ·黄芪和APS对刺参抗病力的影响 | 第84-85页 |
| ·不同处理方式的黄芪应用效果 | 第85页 |
| ·小结 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-92页 |
| 4 饲喂黄芪和黄芪多糖对刺参生长性能的影响 | 第92-116页 |
| ·前言 | 第92页 |
| ·材料与设备 | 第92-94页 |
| ·实验材料 | 第92-93页 |
| ·试剂 | 第93页 |
| ·设备 | 第93-94页 |
| ·实验装置 | 第94页 |
| ·实验方法 | 第94-98页 |
| ·饲料制备 | 第94页 |
| ·实验设计 | 第94页 |
| ·生长指标的测定 | 第94-95页 |
| ·体壁一般营养成分的测定 | 第95页 |
| ·粗酶液制备 | 第95页 |
| ·消化酶活力测定 | 第95-96页 |
| ·蛋白质浓度测定 | 第96页 |
| ·肠道菌株的分离与培养 | 第96页 |
| ·体外实验菌株的初筛 | 第96-97页 |
| ·体外实验菌株的复筛 | 第97页 |
| ·褐藻酸酶活力测定 | 第97页 |
| ·数据的统计分析 | 第97-98页 |
| ·结果 | 第98-105页 |
| ·黄芪和APS对刺参SGR的影响 | 第98-99页 |
| ·黄芪和APS对脏壁比的影响 | 第99页 |
| ·黄芪和APS对体壁一般营养成分的影响 | 第99-100页 |
| ·黄芪和APS对消化酶活力的影响 | 第100-103页 |
| ·体内实验中细菌在平板上的生长 | 第103页 |
| ·体内实验中产褐藻酸酶菌在肠壁总异养菌中的比值 | 第103-104页 |
| ·体内实验中产褐藻酸酶菌在肠道泥样总异养菌中的比值 | 第104页 |
| ·体外实验中菌种筛选 | 第104页 |
| ·体外实验中APS对产酶菌生物量和酶活力的影响 | 第104-105页 |
| ·讨论 | 第105-111页 |
| ·黄芪和APS对提高刺参SGR的机制 | 第105-107页 |
| ·黄芪和APS对脏壁比的影响 | 第107页 |
| ·黄芪和APS对体壁主要成分的影响 | 第107-108页 |
| ·黄芪和APS对消化酶活力的影响 | 第108-110页 |
| ·黄芪和APS对肠道产褐藻酸酶菌生物量的影响 | 第110-111页 |
| ·不同浓度的APS对产褐藻酸酶菌生物量和产酶活力的影响 | 第111页 |
| ·消化酶活力与生长的关系 | 第111页 |
| ·小结 | 第111-112页 |
| 参考文献 | 第112-116页 |
| 5 结论与展望 | 第116-117页 |
| ·结论 | 第116页 |
| ·展望 | 第116-117页 |
| 创新点摘要 | 第117-118页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第118-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
| 个人简历 | 第120-121页 |
