摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
1 引言 | 第12-20页 |
·研究的目的及意义 | 第12页 |
·rol基因研究概况 | 第12-16页 |
·rol基因 | 第12-14页 |
·rol基因在遗传改良中的应用 | 第14-16页 |
·基因沉默、基因表达调控及基因功能的研究 | 第16-18页 |
·转基因沉默 | 第16-17页 |
·基因功能的研究方法 | 第17-18页 |
·问题与展望 | 第18-20页 |
2 转Ri质粒三倍体毛白杨高效再生体系的建立 | 第20-25页 |
·材料 | 第20页 |
·植物材料 | 第20页 |
·杨树组织培养基 | 第20页 |
·试验方法 | 第20-21页 |
·毛白杨无菌苗的获得 | 第20-21页 |
·诱导叶片不定芽适宜培养基的筛选 | 第21页 |
·暗培养对不定芽诱导效果的影响 | 第21页 |
·结果与分析 | 第21-25页 |
·外殖体适宜消毒时间的选择 | 第21-22页 |
·适宜培养基的筛选 | 第22-23页 |
·暗培养对不定芽诱导效果的影响 | 第23-25页 |
3 转Ri质粒三倍体毛白杨遗传转化体系的建立与优化 | 第25-33页 |
·材料 | 第25-26页 |
·质粒载体 | 第25-26页 |
·植物材料 | 第26页 |
·培养基 | 第26页 |
·试剂 | 第26页 |
·主要仪器设备 | 第26页 |
·方法 | 第26-28页 |
·Km对诱导叶片不定芽的影响 | 第26页 |
·CTX对诱导叶片不定芽的影响 | 第26页 |
·CTX抑菌浓度的确定 | 第26-27页 |
·遗传转化及筛选 | 第27页 |
·转化条件的优化 | 第27-28页 |
·结果与分析 | 第28-33页 |
·Km对诱导叶片不定芽的影响 | 第28页 |
·CTX对诱导叶片不定芽的影响 | 第28-29页 |
·CTX对侵菌叶片的抑菌效果 | 第29-30页 |
·不同侵染时间对转化效率的影响 | 第30页 |
·共培养时间的确定 | 第30-31页 |
·转rolB和rolC基因植株的筛选及获得 | 第31-33页 |
4 转基因植株的检测 | 第33-39页 |
·材料 | 第33-34页 |
·植物材料 | 第33页 |
·质粒 | 第33页 |
·主要药品试剂 | 第33页 |
·重要仪器设备 | 第33页 |
·PCR引物设计 | 第33-34页 |
·方法 | 第34-36页 |
·植物总DNA的提取(CTAB提取法) | 第34页 |
·农杆菌质粒DNA的提取(碱裂解法) | 第34-35页 |
·PCR检测 | 第35页 |
·转rolB基因植株的GUS检测 | 第35-36页 |
·结果与分析 | 第36-39页 |
·转基因植株的形态鉴定 | 第36页 |
·转基因植株的PCR检测 | 第36页 |
·rolB-GUS基因表达的定位分析 | 第36-39页 |
5 转基因植株形态及生长变异研究 | 第39-46页 |
·材料 | 第39页 |
·试验方法 | 第39页 |
·结果与分析 | 第39-46页 |
·转基因无性系的形态变异 | 第39页 |
·转rolB基因无性系的生长变异 | 第39-43页 |
·转rolC基因无性系的生长变异 | 第43-46页 |
6 转基因植株叶片的解剖结构 | 第46-51页 |
·材料 | 第46页 |
·植物材料 | 第46页 |
·主要药品仪器 | 第46页 |
·研究方法 | 第46-47页 |
·材料的选取及固定 | 第46页 |
·石蜡切片的制备 | 第46-47页 |
·结果与分析 | 第47-51页 |
·转rolB基因试管苗叶片的解剖结构 | 第47-48页 |
·转rolC基因试管苗叶片解剖结构的变异 | 第48-51页 |
7 讨论与结论 | 第51-55页 |
·讨论 | 第51-54页 |
·结论 | 第54-55页 |
参考文献 | 第55-61页 |
图版1 | 第61-63页 |
图版2 | 第63-65页 |
在读期间发表的学术论文 | 第65-66页 |
作者简介 | 第66-67页 |
致谢 | 第67页 |