| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 1.文献综述 | 第11-19页 |
| ·稀有鮈鲫胚胎发育过程 | 第11-12页 |
| ·肌肉分化分子调控 | 第12-13页 |
| ·MSTN基因的研究进展与展望 | 第13-17页 |
| ·MSTN的研究概况 | 第13-14页 |
| ·MSTN的时空表达特征 | 第14页 |
| ·MSTN的作用与表达的调节 | 第14-15页 |
| ·MSTN基因的作用机理 | 第15-17页 |
| ·β-肌动蛋白基因研究简述 | 第17页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第17-19页 |
| 2.材料和方法 | 第19-29页 |
| ·实验材料 | 第19页 |
| ·主要仪器设备 | 第19页 |
| ·主要试剂 | 第19-20页 |
| ·实验方法 | 第20-29页 |
| ·实验鱼的处理 | 第20页 |
| ·RNA的提取 | 第20-21页 |
| ·采用Trizol试剂提取稀有鮈鲫和泥鳅肌肉组织总RNA | 第20-21页 |
| ·采用SV Total RNA Isolation Kit试剂盒提取不同发育时期的胚胎和各组织总RNA(用于RT-PCR检测MSTN表达的时空模式) | 第21页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第21-22页 |
| ·RT-PCR扩增基因cDNA片段 | 第22-23页 |
| ·纯化PCR产物 | 第23页 |
| ·E.coli感受态的制备 | 第23-24页 |
| ·目的DNA片段与pMD 18-T载体的连接 | 第24页 |
| ·转化 | 第24页 |
| ·RACE-PCR克隆基因全长 | 第24-28页 |
| ·序列分析 | 第28页 |
| ·用RT-PCR研究基因的表达 | 第28-29页 |
| 3.结果 | 第29-52页 |
| ·稀有鮈鲫MSTN基因cDNA的克隆 | 第29-42页 |
| ·稀有鮈鲫MSTN基因片段的克隆 | 第29页 |
| ·RACE-PCR扩增稀有鮈鲫MSTN基因5’端 | 第29-30页 |
| ·RACE-PCR扩增稀有鮈鲫MSTN基因3’端 | 第30-31页 |
| ·稀有鮈鲫MSTN基因的cDNA序列分析 | 第31-34页 |
| ·稀有鮈鲫MSTN基因组DNA中一内含子序列 | 第34页 |
| ·稀有鮈鲫MSTN蛋白的信号肽预测 | 第34-35页 |
| ·同源性分析 | 第35-39页 |
| ·进化树构建 | 第39-41页 |
| ·稀有鮈鲫MSTN基因时空表达特征分析 | 第41-42页 |
| ·稀有鮈鲫MSTN基因组织表达RT-PCR分析 | 第41页 |
| ·稀有鮈鲫MSTN基因在不同胚胎发育阶段的RT-PCR分析 | 第41-42页 |
| ·泥鳅MSTN基因cDNA的克隆及表达分析 | 第42-47页 |
| ·泥鳅MSTN基因片段的扩增和克隆 | 第42-44页 |
| ·泥鳅MSTN基因片段与其他鱼同源性分析 | 第44-46页 |
| ·泥鳅MSTN基因的组织表达分析 | 第46-47页 |
| ·稀有鮈鲫β-actin基因片段的克隆 | 第47-52页 |
| ·稀有鮈鲫β-actin基因片段的克隆及序列分析 | 第47-49页 |
| ·同源性比较 | 第49页 |
| ·系统发育分析 | 第49-50页 |
| ·稀有鮈鲫β-actin的时空表达分析 | 第50-52页 |
| 4.讨论 | 第52-55页 |
| ·稀有鮈鲫和泥鳅MSTN基因特征 | 第52-53页 |
| ·稀有鮈鲫和泥鳅MSTN基因组织表达特征 | 第53-54页 |
| ·稀有鮈鲫β-actin基因特征 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 附录 | 第60-62页 |
| 在校期间论文发表情况 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
