| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-40页 |
| ·植物细胞水分胁迫信号识别与转导 | 第13-15页 |
| ·水分胁迫信号的识别 | 第13-14页 |
| ·水分胁迫信号的胞内转导 | 第14-15页 |
| ·气孔运动机理研究进展 | 第15-18页 |
| ·化学渗透调节假说(chemiosmotic hypothesis) | 第15-17页 |
| ·气孔运动机理研究的新进展 | 第17-18页 |
| ·干旱下植物气孔运动的调控 | 第18-20页 |
| ·水力信号(Hydraulic signal)控制理论 | 第18-19页 |
| ·化学信号(Chemical signal)控制理论 | 第19-20页 |
| ·水力信号与化学信号共同调节干旱下植物的气孔运动 | 第20页 |
| ·NO及其在气孔运动中的作用 | 第20-26页 |
| ·NO的理化性质 | 第20-21页 |
| ·NO的产生途径 | 第21-23页 |
| ·动物体内NO的来源 | 第21页 |
| ·植物体内NO的生物合成 | 第21-23页 |
| ·NO在植物体内的生理功能 | 第23-24页 |
| ·NO与植物的生长发育 | 第23页 |
| ·NO与植物的防御反应 | 第23页 |
| ·NO与逆境胁迫 | 第23-24页 |
| ·NO在植物中的信号转导 | 第24页 |
| ·NO与气孔的运动 | 第24-26页 |
| ·NO参与调控保卫细胞气孔运动 | 第24-25页 |
| ·保卫细胞NO信号转导 | 第25-26页 |
| ·H_2O_2及其在气孔运动中的作用 | 第26-29页 |
| ·植物体内H_2O_2的产生 | 第26-27页 |
| ·植物体内H2O2的清除 | 第27页 |
| ·H_2O_2在植物体内的生理功能 | 第27-28页 |
| ·H_2O_2参与调控保卫细胞气孔运动 | 第28-29页 |
| ·气孔运动调控中H_2O_2的信号转导 | 第29页 |
| ·液泡及其在气孔运动中的作用 | 第29-34页 |
| ·植物的液泡 | 第30-31页 |
| ·液泡的生理功能 | 第31-32页 |
| ·维持细胞内的离子稳态并参与信号转导 | 第31页 |
| ·植物生存依赖完整功能的液泡 | 第31-32页 |
| ·参与植物的抗逆过程 | 第32页 |
| ·保卫细胞的液泡 | 第32-33页 |
| ·液泡在气孔运动中的作用 | 第33页 |
| ·液泡形态的研究方法 | 第33-34页 |
| ·微丝骨架及其在气孔运动中的作用 | 第34-38页 |
| ·植物细胞微丝骨架及其功能 | 第34-35页 |
| ·保卫细胞的微丝骨架 | 第35-36页 |
| ·微丝骨架参与气孔运动的信号转导途径 | 第36-37页 |
| ·微丝骨架与液泡形态功能的关系 | 第37页 |
| ·微丝骨架的标记方法 | 第37-38页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第38-40页 |
| 第二章 PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中NO作用研究 | 第40-50页 |
| ·材料和方法 | 第40-42页 |
| ·材料 | 第40页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第40-41页 |
| ·表皮条的剥离和分析 | 第41页 |
| ·NO荧光探针的装载 | 第41页 |
| ·激光扫描共聚焦显微镜检测 | 第41-42页 |
| ·结果与分析 | 第42-46页 |
| ·PEG6000胁迫对气孔行为的影响 | 第42-43页 |
| ·不同浓度SNP对气孔行为的影响 | 第43页 |
| ·c-PTIO和L-NAME对PEG6000胁迫诱导气孔关闭的影响 | 第43-45页 |
| ·PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中内源NO的变化 | 第45-46页 |
| ·讨论 | 第46-50页 |
| ·NO在PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中的作用 | 第46-48页 |
| ·NO在PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中产生途径的探索 | 第48页 |
| ·NO在PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中的可能作用机制的探讨 | 第48-50页 |
| 第三章 PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中H_2O_2作用研究 | 第50-59页 |
| ·材料和方法 | 第50-52页 |
| ·材料 | 第50页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第50-51页 |
| ·表皮条的剥离和分析 | 第51页 |
| ·H_2O_2荧光探针的装载 | 第51页 |
| ·激光扫描共聚焦显微镜检测 | 第51-52页 |
| ·结果与分析 | 第52-57页 |
| ·不同浓度H_2O_2对气孔行为的影响 | 第52页 |
| ·ASA、CAT、DPI和SHAM对PEG6000胁迫诱导气孔关闭的影响 | 第52-55页 |
| ·PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中内源H_2O_2的变化 | 第55-57页 |
| ·讨论 | 第57-59页 |
| ·H_2O_2在PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中的作用 | 第57-58页 |
| ·H_2O_2在PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中产生途径的探索 | 第58页 |
| ·H_2O_2在PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中的可能作用机制的探讨 | 第58-59页 |
| 第四章 PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中微丝骨架作用研究 | 第59-65页 |
| ·材料和方法 | 第59-61页 |
| ·材料 | 第59页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第59-60页 |
| ·表皮条的剥离和分析 | 第60页 |
| ·H_2O_2和NO荧光探针的装载 | 第60页 |
| ·激光扫描共聚焦显微镜检测 | 第60-61页 |
| ·结果和分析 | 第61-63页 |
| ·CB对H_2O_2、SNP和PEG6000胁迫诱导气孔关闭的影响 | 第61-62页 |
| ·CB对PEG6000胁迫下内源H_2O_2和NO荧光的影响 | 第62-63页 |
| ·讨论 | 第63-65页 |
| 第五章 PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中液泡的变化 | 第65-72页 |
| ·材料和方法 | 第65-66页 |
| ·材料 | 第65页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第65页 |
| ·表皮条的剥离和分析 | 第65-66页 |
| ·液泡的荧光标记 | 第66页 |
| ·激光扫描共聚焦显微镜检测 | 第66页 |
| ·结果和分析 | 第66-70页 |
| ·讨论 | 第70-72页 |
| 第六章 PEG6000胁迫诱导气孔关闭过程中液泡的变化与NO、H_2O_2、微丝骨架关系研究 | 第72-81页 |
| ·材料和方法 | 第72-73页 |
| ·材料 | 第72页 |
| ·主要试剂及仪器 | 第72页 |
| ·表皮条的剥离和分析 | 第72-73页 |
| ·液泡的荧光标记 | 第73页 |
| ·激光扫描共聚焦显微镜检测 | 第73页 |
| ·结果和分析 | 第73-78页 |
| ·c-PTIO、L-NAME、ASA、CAT、DPI和SHAM对PEG6000胁迫下蚕豆保卫细胞液泡形态变化的影响 | 第73-78页 |
| ·H_2O_2和NO对蚕豆保卫细胞液泡形态的影响 | 第78页 |
| ·CB对液泡形态变化的影响 | 第78页 |
| ·讨论 | 第78-81页 |
| 结论 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-103页 |
| 致谢 | 第103-104页 |
| 博士在读期间研究成果 | 第104页 |
