引言 | 第1-28页 |
SARS研究进展 | 第28-44页 |
一 SARS发病 | 第28页 |
二 SARS发病机制 | 第28-30页 |
1 呼吸系统损伤 | 第28页 |
2 免疫系统损伤 | 第28-29页 |
3 多脏器损伤 | 第29-30页 |
4 肺纤维化 | 第30页 |
三 SARS-CoV | 第30-33页 |
1 SARS-CoV在冠状病毒属中的分类学地位 | 第30-31页 |
2 SARS-CoV的蛋白及其功能 | 第31-33页 |
(1) SARS-CoV编码的主要结构蛋白及其功能 | 第31-32页 |
(2) SARS-CoV编码的非结构蛋白及其功能 | 第32-33页 |
(3) SARS-CoV受体 | 第33页 |
四 传染性非典型肺炎临床诊断标准(试行) | 第33-34页 |
五 卫生部:传染性非典型肺炎推荐治疗方案 | 第34-35页 |
六 预后 | 第35-36页 |
七 中医药对SARS认识 | 第36-38页 |
八 疫苗研究以及中医药抗病毒优势 | 第38-41页 |
九 中药抗戾饮的研究 | 第41-42页 |
十 呼吸道冠状病毒体内模型研究 | 第42-44页 |
第一章 抗戾饮体外抗呼吸道病毒实验研究 | 第44-51页 |
1 实验目的 | 第44页 |
2 实验材料 | 第44-45页 |
·实验细胞 | 第44页 |
·实验病毒株 | 第44页 |
·实验试剂 | 第44页 |
·实验仪器 | 第44-45页 |
·实验用药 | 第45页 |
3 实验方法 | 第45-48页 |
·细胞的培养 | 第45页 |
·病毒传代 | 第45页 |
·病毒滴度的测定 | 第45-46页 |
·RSV、Ad3病毒的滴度测定 | 第45-46页 |
·FM1病毒的滴度测定 | 第46页 |
·药物细胞毒性作用的测定 | 第46-47页 |
·实验药物对MRC-5细胞的毒性测定 | 第46页 |
·实验药物对MDCK细胞的毒性测定 | 第46-47页 |
·药物的抗病毒实验 | 第47-48页 |
·药物在MRC-5细胞中抗RSV、Ad3活性的测定 | 第47页 |
·药物在MDCK细胞中抗FM1活性的测定 | 第47-48页 |
·治疗指数的计算:TI=TC_(50)/IC_(50) | 第48页 |
4 实验结果 | 第48-49页 |
·药物对两种细胞的毒性浓度(表1) | 第48页 |
·药物对病毒的半数抑制浓度(表2) | 第48-49页 |
·药物的治疗指数(表3) | 第49页 |
5 结论 | 第49页 |
6 附图(见论文后附图1~11) | 第49-51页 |
第二章 抗戾饮对呼吸道冠状病毒体内感染模型的影响 | 第51-95页 |
第一节 呼吸道冠状病毒——IBV的增殖与鉴定 | 第51-60页 |
前言 | 第51页 |
1 实验材料 | 第51-52页 |
·病毒 | 第51页 |
·实验鸡胚 | 第51页 |
·主要试剂 | 第51-52页 |
·主要仪器 | 第52页 |
2 实验方法 | 第52-55页 |
·病毒的增殖 | 第52页 |
·致鸡胚矮小化实验 | 第52页 |
·对新城疫病毒B1株(NDV-B1)干扰实验 | 第52-53页 |
·IBV基因组N基因的RT-PCR鉴定 | 第53-55页 |
·引物设计与合成 | 第53页 |
·病毒总RNA的抽提 | 第53-54页 |
·cDNA合成(RT) | 第54页 |
·N基因目的片断的PCR扩增 | 第54-55页 |
3 实验结果 | 第55-56页 |
·病毒的增殖 | 第55页 |
·致鸡胚矮化实验 | 第55页 |
·对NDV-B1株的干扰实验 | 第55-56页 |
·IBV基因组N基因的RT-PCR鉴定结果 | 第56页 |
4 讨论 | 第56-59页 |
5 结论 | 第59-60页 |
第二节 呼吸道冠状病毒——IBV感染雏鸡模型研究 | 第60-71页 |
前言 | 第60页 |
1 实验材料 | 第60-61页 |
·病毒 | 第60页 |
·实验用动物 | 第60页 |
·主要试剂 | 第60-61页 |
·主要仪器 | 第61页 |
2 实验方法 | 第61-64页 |
·人工致鸡感染鸡传染性支气管炎病毒模型建立 | 第61页 |
·观测指标 | 第61-64页 |
·一般观察及体重、肛温检测 | 第61-62页 |
·呼吸道症状观察与评分 | 第62页 |
·病理组织学检测 | 第62页 |
·鸡组织IBV RT-PCR检测 | 第62-64页 |
3 实验结果 | 第64-67页 |
·一般情况与体重及体温的变化 | 第64-65页 |
·呼吸道症状观察与评分 | 第65-66页 |
·病理组织学检测 | 第66页 |
·IBV N基因的RT-PCR鉴定结果 | 第66-67页 |
4 讨论 | 第67-70页 |
5 结论 | 第70-71页 |
第三节 抗戾饮对人工致雏鸡感染呼吸道冠状病毒的影响研究 | 第71-95页 |
前言 | 第71页 |
1 材料及造模方法 | 第71-73页 |
·药物 | 第72页 |
·毒种及实验用动物 | 第72页 |
·主要实验试剂 | 第72页 |
·主要仪器 | 第72-73页 |
·病毒模型制造、分组及给药 | 第73页 |
2 实验一 抗戾饮对人工致雏鸡感染IBV模型组织N基因相对表达量的影响 | 第73-86页 |
·实验方法 | 第73-76页 |
·造模、分组及给药方法: | 第73页 |
·实验观察及指标 | 第73页 |
·鸡组织IBV病毒实时荧光定量PCR测定 | 第73-76页 |
·结果与分析 | 第76-86页 |
·Real-time PCR引物设计 | 第76-77页 |
·Real-time PCR循环参数的优化 | 第77-80页 |
·Real-time PCR读板温度的优化 | 第80-83页 |
·Real-time PCR重复性检测 | 第83-84页 |
·Real-time PCR标准曲线的构建与样本IBV N基因相对表达量的测定 | 第84-86页 |
·病理组织学检测 | 第86页 |
3 实验二 抗戾饮对人工致鸡感染雏鸡IBV模型的保护作用 | 第86-88页 |
·实验方法 | 第86-87页 |
·造模、分组及给药方法 | 第86页 |
·实验观察 | 第86页 |
·统计学处理 | 第86-87页 |
·结果与分析 | 第87-88页 |
·一般观察 | 第87页 |
·发病率、死亡率、及死亡保护率结果 | 第87页 |
·体温变化结果 | 第87-88页 |
4 实验三 抗戾饮对人工致雏鸡感染IBV模型抗体形成的作用 | 第88-91页 |
·实验方法 | 第88-90页 |
·造模、分组及给药方法 | 第88-89页 |
·样本收集 | 第89页 |
·IBV抗体检测方法 | 第89-90页 |
·统计学处理 | 第90页 |
·结果及分析 | 第90-91页 |
5 实验四 抗戾饮对雏鸡的急性毒性实验 | 第91-92页 |
·实验材料 | 第91页 |
·药物 | 第91页 |
·动物 | 第91页 |
·实验方法 | 第91页 |
·实验结果及分析 | 第91-92页 |
6 讨论 | 第92-94页 |
7 结论 | 第94-95页 |
第三章 结语 | 第95-98页 |
1 已达到的目标 | 第95页 |
·体外抗病毒实验 | 第95页 |
·体内抗病毒实验 | 第95页 |
2 本课题的特点和创新性 | 第95-96页 |
3 本课题的不足之处 | 第96页 |
4 在读期间参与课题 | 第96页 |
5 在读期间发表的论文情况 | 第96-97页 |
6 获奖情况 | 第97-98页 |
文献综述一 实时荧光定量PCR的研究进展及应用 | 第98-107页 |
1 实时荧光定量PCR的原理 | 第98-103页 |
·荧光域值(threshold)的设定 | 第98页 |
·Ct值与起始模板的关系 | 第98-99页 |
·实时定量PCR的荧光模式 | 第99-103页 |
2 实时荧光定量PCR的定量方法 | 第103-104页 |
3 实时荧光定量PCR引物和探针设计要求 | 第104-105页 |
4 实时荧光定量PCR的优点与局限性 | 第105页 |
5 实时荧光定量PCR的应用 | 第105-106页 |
6 展望 | 第106-107页 |
文献综述二 鸡传染性支气管炎(IB)研究进展 | 第107-111页 |
1 IB概述 | 第107页 |
2 IBV的分子结构 | 第107-108页 |
·基因组结构 | 第107页 |
·病毒蛋白组成 | 第107-108页 |
·纤突(S)蛋白 | 第107-108页 |
·膜(M)蛋白 | 第108页 |
·核衣壳(N)蛋白 | 第108页 |
3 IB诊断方法 | 第108-110页 |
4 IBV发病与临床诱因 | 第110-111页 |
参考文献 | 第111-118页 |
附图 | 第118-124页 |
致谢 | 第124页 |