1 引言 | 第1-26页 |
1.1 PCD的机理研究 | 第9-11页 |
1.1.1 Bcl-2蛋白家族在PCD中的作用 | 第9-10页 |
1.1.2 Caspase蛋白家族在PCD中的作用 | 第10页 |
1.1.3 两条主要的凋亡信号通路 | 第10-11页 |
1.1.3.1 从死亡受体家族TNFR(tumor necrosis factor receptor)家族起始的凋亡通路 | 第10页 |
1.1.3.2 线粒体位于中心地位的凋亡通路 | 第10-11页 |
1.2 植物PCD的研究概况 | 第11-15页 |
1.2.1 植物的营养生长与PCD | 第11-12页 |
1.2.1.1 糊粉层的退化消失 | 第11-12页 |
1.2.1.2 根冠细胞的死亡 | 第12页 |
1.2.1.3 木质部导管的分化 | 第12页 |
1.2.1.4 植物的衰老 | 第12页 |
1.2.2 植物的生殖生长与PCD | 第12-13页 |
1.2.2.1 单性花形成 | 第12-13页 |
1.2.2.2 体胚发生 | 第13页 |
1.2.3 环境胁迫与PCD | 第13-14页 |
1.2.3.1 低氧适应 | 第13页 |
1.2.3.2 抗病反应 | 第13-14页 |
1.2.4 PCD相关基因和蛋白 | 第14-15页 |
1.2.4.1 PCD相关基因 | 第14-15页 |
1.2.4.2 PCD相关蛋白 | 第15页 |
1.3 植物PCD过程中的信号转导和多种调节物质 | 第15-24页 |
1.3.1 活性氧(ROS)信号作用 | 第15-19页 |
1.3.1.1 ROS与DNA损伤 | 第16页 |
1.3.1.2 ROS与凋亡相关分子的关系 | 第16-18页 |
1.3.1.3 ROS与Ca~(2+) | 第18页 |
1.3.1.4 ROS在两条凋亡信号转导中的作用 | 第18-19页 |
1.3.2 磷脂酶在信号转导中的作用 | 第19-22页 |
1.3.2.1 磷脂与磷脂酶概述 | 第19-21页 |
1.3.2.2 磷脂酶参与的信号传导途径 | 第21-22页 |
1.3.3 植物激素与PCD | 第22-23页 |
1.3.4 水杨酸和茉莉酸 | 第23页 |
1.3.5 多胺与PCD | 第23-24页 |
1.3.6 热稳定蛋白(HSPs)与PCD | 第24页 |
1.4 种子老化过程中的PCD | 第24-25页 |
1.4.1 细胞超微结构 | 第25页 |
1.4.2 染色体畸变 | 第25页 |
1.5 研究家榆种子老化过程中PCD的意义 | 第25-26页 |
2 种子老化过程中细胞程序性死亡的特征观察 | 第26-32页 |
2.1 材料与方法 | 第26-28页 |
2.1.1 材料和处理 | 第26页 |
2.1.2 种子发芽率及活力测定 | 第26页 |
2.1.3 光学显微镜观察 | 第26-27页 |
2.1.4 细胞的分离及DAPI荧光检测 | 第27页 |
2.1.5 种子总DNA的提取和琼脂糖凝胶电泳分析 | 第27-28页 |
2.1.6 电解质泄漏率的测定 | 第28页 |
2.2 结果与分析 | 第28-30页 |
2.2.1 种子老化过程中发芽率和活力指数的变化 | 第28页 |
2.2.2 形态学观察 | 第28页 |
2.2.3 生化特征观察 | 第28-29页 |
2.2.4 家榆种子老化过程中电解质泄漏率的变化 | 第29-30页 |
2.3 讨论 | 第30-32页 |
3 PCD过程中的信号转导系统和调节物质 | 第32-41页 |
3.1 活性氧在种子PCD过程中的信号作用 | 第32-35页 |
3.1.1 方法 | 第32-33页 |
3.1.1.1 O_2~(·-)产生速率的测定 | 第32页 |
3.1.1.2 H_2O_2含量的测定 | 第32页 |
3.1.1.3 磷脂酶的提取与活性测定 | 第32-33页 |
3.1.1.4 电子显微镜观察钙超微细胞化学定位 | 第33页 |
3.1.1.5 抗氧化酶的提取与活性测定 | 第33页 |
3.1.2 结果与分析 | 第33-35页 |
3.1.2.1 种子老化过程中O_2~(·-)产生速率和H_2O_2含量的变化 | 第33-34页 |
3.1.2.2 家榆种子老化过程中Ca~(2+)的变化 | 第34页 |
3.1.2.3 种子老化过程中磷脂酶活性的变化 | 第34-35页 |
3.1.2.4 种子老化过程中抗氧化酶活性的变化 | 第35页 |
3.2 种子老化过程中的多种调节物质 | 第35-39页 |
3.2.1 方法 | 第35-36页 |
3.2.1.1 乙烯释放量的测定 | 第35-36页 |
3.2.1.2 ABA的提取和测定 | 第36页 |
3.2.1.3 多胺的提取与测定 | 第36页 |
3.2.1.4 热稳定蛋白(HSPs)的提取与测定 | 第36页 |
3.2.2 结果与分析 | 第36-39页 |
3.2.2.1 PCD过程中多胺含量和乙烯释放量的变化 | 第36-37页 |
3.2.2.2 PCD过程中ABA含量的变化 | 第37-38页 |
3.2.2.3 PCD过程中HSPs含量的变化 | 第38-39页 |
3.3 讨论 | 第39-41页 |
4 结论 | 第41-43页 |
4.1 结论 | 第41页 |
4.2 本论文的创新之处 | 第41页 |
4.3 下一步的研究思路 | 第41-43页 |
参考文献 | 第43-49页 |
导师简介 | 第49-50页 |
个人简介 | 第50-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
图版说明 | 第52-56页 |