| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-30页 |
| ·高分子量谷蛋白亚基(HMW-GS)对小麦品质特性的影响 | 第13-14页 |
| ·HMW-GS基因的遗传转化方法 | 第14-16页 |
| ·基因枪法 | 第14-15页 |
| ·花粉管通道法 | 第15页 |
| ·农杆菌介导法 | 第15-16页 |
| ·小麦农杆菌转化研究现状 | 第16-28页 |
| ·农杆菌介导的遗传转化机理 | 第16-17页 |
| ·小麦农杆菌转化研究进展 | 第17-18页 |
| ·小麦不同外植体农杆菌转化进展 | 第18-20页 |
| ·影响农杆菌法转化小麦幼胚的因素 | 第20-26页 |
| ·农杆菌转化小麦幼胚存在的主要问题 | 第26-28页 |
| ·本研究的意义、主要内容及技术路线 | 第28-30页 |
| ·立题意义 | 第28-29页 |
| ·技术路线 | 第29-30页 |
| 第二章 小麦幼胚农杆菌转化体系优化 | 第30-55页 |
| ·实验材枓 | 第30-32页 |
| ·外源基因、质粒载体及其农杆菌菌系 | 第30页 |
| ·小麦材料 | 第30-31页 |
| ·试剂及耗材 | 第31-32页 |
| ·仪器设备 | 第32页 |
| ·研究方法 | 第32-37页 |
| ·小麦幼胚培养和转化方法 | 第32-34页 |
| ·生长素种类、浓度及配比优化的设计 | 第34-35页 |
| ·培养基添加其它成分对抗性愈伤组织诱导作用的设计 | 第35页 |
| ·小麦灌浆期间温度条件对再生和转化影响的设计 | 第35-36页 |
| ·幼胚破碎处理培养 | 第36页 |
| ·农杆菌敏感小麦基因型的筛选 | 第36-37页 |
| ·结果与分析 | 第37-53页 |
| ·小麦幼胚农杆菌侵染后高再生力基因型的筛选 | 第37-38页 |
| ·不同生长素配比对获得抗性再生植株的影响 | 第38-43页 |
| ·添加其它成分和简化培养基对获得抗性再生植株的影响 | 第43-46页 |
| ·不同温度条件对小麦再生和转化的影响 | 第46-48页 |
| ·破碎处理小麦幼胚对再生效果的影响 | 第48-52页 |
| ·农杆菌敏感小麦基因型的筛选 | 第52-53页 |
| ·问题讨论 | 第53-55页 |
| ·关于农杆菌转化高培养力小麦基因型的筛选 | 第53页 |
| ·关于胚性愈伤组织诱导率和抗性植株再生率 | 第53页 |
| ·关于抑制幼胚褐化坏死培养基成分改进 | 第53页 |
| ·关于幼胚处理方法改进 | 第53-54页 |
| ·关于不同温度条件对小麦再生和转化的影响 | 第54页 |
| ·关于农杆菌敏感小麦基因型筛选 | 第54-55页 |
| 第三章 高分子量谷蛋白亚基基因向小麦中的转化 | 第55-73页 |
| ·实验材枓 | 第55-57页 |
| ·外源基因、质粒载体及农杆菌菌系 | 第55-56页 |
| ·小麦材料 | 第56-57页 |
| ·试剂及耗材 | 第57页 |
| ·仪器设备 | 第57页 |
| ·PCR引物 | 第57页 |
| ·研究方法 | 第57-62页 |
| ·农杆菌介导法转化小麦幼胚 | 第57-58页 |
| ·小麦抗性再生植株DNA提取 | 第58-59页 |
| ·质粒DNA提取方法 | 第59页 |
| ·DNA片段的回收与纯化 | 第59-60页 |
| ·抗性再生植株的PCR检测 | 第60页 |
| ·抗性再生植株成熟籽粒的SDS-PAGE分析 | 第60-62页 |
| ·结果与分析 | 第62-71页 |
| ·小麦幼胚农杆菌转化及抗性再生植株的获得 | 第62-65页 |
| ·T_0 代抗性再生植株PCR检测 | 第65-66页 |
| ·T_1 代转基因植株PCR检测和遗传分析 | 第66-67页 |
| ·T_1 代成熟籽粒的SDS-PAGE分析 | 第67-68页 |
| ·T_2 代转基因植株PCR检测 | 第68-69页 |
| ·转HMW-GS基因后代性状变异 | 第69-71页 |
| ·问题讨论 | 第71-73页 |
| ·关于小麦幼胚侵染后的褐化拯救和转化效率 | 第71页 |
| ·T_1 代植株分离比例不符合3:1 的可能原因 | 第71页 |
| ·关于高分子量麦谷蛋白亚基转基因沉默及异常重组 | 第71-72页 |
| ·关于农艺性状变异体 | 第72-73页 |
| 第四章 结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 作者简历 | 第82页 |