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SIRT1去乙酰化SATB1并促进ε-珠蛋白基因表达

目录第1-7页
中文摘要第7-9页
Abstract第9-11页
前言第11-26页
 1. SATB1作为染色质组织者调节染色质高级构象和成簇基因的表达第11-14页
   ·染色质高级构象是真核基因表达调控的一个重要层面第11-12页
   ·核基质结合区和核基质结合蛋白的重要作用第12-13页
   ·SATB1作为重要的核基质结合蛋白在染色质高级构象形成中起组织作用第13-14页
 2. SATB1通过调控β-珠蛋白基因簇的染色质高级构象调节β-珠蛋白基因的表达第14-19页
   ·β-珠蛋白基因簇的结构和表达特点第14-15页
   ·染色质高级构象是调控β-珠蛋白基因簇基因表达的重要方面第15-16页
   ·SATB1通过募集组蛋白修饰酶CBP调节β-珠蛋白基因簇基因的表达第16-17页
   ·SATB1在细胞核水平介导β-珠蛋白基因簇定位于核基质区域第17页
   ·SATB1介导β-珠蛋白基因簇内核基质结合区的相互作用参与活性染色质的形成第17-19页
 3. SATB1的翻译后修饰促进其对下游基因的精确调控第19-21页
   ·翻译后修饰精确调控蛋白因子的功能第19-20页
   ·SATB1的翻译后修饰促进其对下游基因的精确调控第20页
   ·K562细胞用Hemin诱导向红系分化过程中SATB1的乙酰化修饰水平下降第20-21页
 4. SIRT1通过去乙酰化多种靶蛋白发挥功能第21-23页
   ·SIRT1在多种生理过程中发挥功能第21页
   ·SIRT1通过去乙酰化各种靶蛋白发挥功能第21-22页
   ·S1RT1可在NAD~+存在的情况下对底物进行去乙酰化修饰第22-23页
 5. 本研究的理论问题与主要内容第23-26页
   ·本研究的理论问题第23-24页
   ·本研究的主要内容第24-26页
材料与方法第26-48页
 1. 实验材料第26-28页
   ·菌株与质粒第26页
   ·细胞系第26页
   ·限制性内切酶及修饰酶第26页
   ·抗体第26-27页
   ·其它主要试剂和材料第27页
   ·主要仪器设备第27-28页
 2. 实验方法第28-48页
   ·基本技术路线第28页
   ·细菌操作与质粒的转化第28-30页
     ·感受态大肠杆菌DH5-α制备第28-29页
     ·质粒的转化第29页
     ·质粒的提取和纯化第29-30页
   ·细胞培养第30-31页
     ·细胞的生长条件第30页
     ·细胞的传代第30页
     ·细胞的复苏及冻存第30-31页
   ·K562细胞的红系诱导和检测第31页
     ·K562细胞向红系分化的诱导第31页
     ·K562细胞红系分化的检测第31页
   ·细胞的转染,逆转录病毒的包装和混合细胞株筛选第31-33页
   ·实时定量PCR第33-34页
     ·细胞总RNA的提取第33页
     ·cDNA第一链的合成第33页
     ·real-time PCR检测第33-34页
   ·Western-Blotting第34-37页
     ·细胞总蛋白提取第34页
     ·蛋白质浓度测定第34-35页
     ·聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)第35页
       ·胶的制备第35页
       ·样品的制备和上样第35页
       ·电泳第35页
     ·转膜第35-36页
     ·抗原抗体反应第36页
     ·辣根过氧化物酶化学发光法检测蛋白第36-37页
   ·染色质免疫沉淀(ChIP)第37-40页
     ·细胞培养第37页
     ·细胞固定第37-38页
     ·细胞核的提取第38页
     ·细胞核的裂解与超声处理第38页
     ·超声结果的分析第38页
     ·免疫沉淀第38-39页
     ·DNA的分离及纯化第39页
     ·PCR反应检测第39-40页
   ·蛋白质免疫共沉淀第40-41页
     ·细胞培养第40-41页
     ·细胞裂解第41页
     ·免疫沉淀第41页
     ·SDS-PAGE第41页
   ·休外乙酰化和去乙酰化反应第41-44页
   ·染色质构象捕获(3C)第44-48页
     ·交联固定的细胞核的制备第44页
     ·细胞裂解与细胞核的分离第44-45页
     ·台盼蓝染色检测细胞裂解情况第45页
     ·非特异结合蛋白的洗脱与SDS的中和第45页
     ·细胞核的保存第45页
     ·细胞核内染色质DNA的限制性内切酶消化与鉴定第45-46页
     ·交联固定的染色质复合物内DNA分子的连接第46页
     ·连接产物DNA的制备与定量第46-48页
实验结果第48-69页
 1. SATB1与SIRT1相互作用第48-52页
   ·SATB1和SIRT1之间存在蛋白质相互作用第48-52页
     ·外源SATB1和SIRT1蛋白相互作用第48-50页
     ·内源SATB1和SIRT1蛋白相互作用第50-52页
   ·SATB1和SIRT1蛋白共定位第52页
 2. SIRT1去乙酰化SATB1第52-57页
   ·SIRT1的抑制剂NAM增加而激活剂Resveratrol降低SATB1乙酰化水平第52-54页
   ·SIRT1体外去乙酰化SATB1第54-55页
   ·SIRT1过表达降低SATB1乙酰化水平第55-56页
   ·SIRT1体外去乙酰化SATB1第136位和第175位赖氨酸第56-57页
 3. SIRT1促进ε-珠蛋白基因的表达第57-66页
   ·在K562细胞中SIRT1促进ε-珠蛋白基因表达第57-60页
     ·K562细胞中SIRT1激活剂Resveratrol促进ε-珠蛋白基因表达第57-58页
     ·K562细胞中SIRT1抑制剂NAM抑制ε-珠蛋白基因表达第58页
     ·K562细胞中过表达SIRT1促进ε-珠蛋白基因表达第58-59页
     ·K562细胞中干扰SIRT1降低ε-珠蛋白基因表达第59-60页
   ·在原代红系细胞中SIRT1促进ε-珠蛋白基因表达第60-62页
     ·原代红系细胞中SIRT1激活剂Resveratrol促进而抑制剂NAM抑制ε-珠蛋白基因表达第60-61页
     ·原代红系细胞中SIRT1干扰降低ε-珠蛋白基因表达第61-62页
   ·SIRT1的激活剂和抑制剂对ε-珠蛋白基因表达的调节依赖SATB1的PDZ区域第62-63页
   ·Hemin诱导K562细胞向红系分化过程中SIRT1促进ε-珠蛋白基因的表达第63-66页
     ·Hemin诱导K562细胞向红系分化过程中SIRT1蛋白表达量增加第63-64页
     ·Hemin诱导K562细胞向红系分化过程中SIRT1在MAR~(HS2)和MAR~ε上的结合增强第64-65页
     ·SIRT1干扰影响Hemin诱导的ε-珠蛋白基因表达第65-66页
 4. S1RT1促进SATB1介导的核基质结合区间的相互作用第66-69页
   ·干扰SIRT1减弱SATB1在MAR~(HS2)和MAR~ε上的结合第66-67页
   ·干扰SIRT1减弱SATB1介导的MAR~(HS2)和MAR~ε之间的相互作用第67-69页
讨论第69-77页
 1. 本研究概述第69页
 2. SIRT1去乙酰化SATB1的PDZ结构域第69-71页
   ·PDZ结构域对SATB1的染色质组织功能非常重要第69-70页
   ·PCAF乙酰化SATB1的PDZ结构域而SIRT1对其去乙酰化第70页
   ·SATB1的PDZ结构域的乙酰化和去乙酰化修饰调节其在MAR元件上的结合能力第70-71页
 3. SIRT1是一个重要的珠蛋白基因的调节因子第71-73页
   ·本研究发现SIRT1可以调节珠蛋白基因表达第71-72页
   ·SIRT1对珠蛋白基因表达的调节是SATB1的PDZ结构域依赖的第72页
   ·SIRT1主要调节ε-珠蛋白基因的表达同时也轻度调节γ-珠蛋白基因的表达第72-73页
   ·SIRT1参与了Hemin诱导的K562细胞向红系分化过程中ε-珠蛋白基因的激活第73页
 4. SIRT1和SATB1共同参与染色质高级构象调节第73-76页
   ·SIRT1通过去乙酰化底物参与调节染色质高级构象第73-75页
   ·染色质组织因子上的翻译后修饰精细调控染色质高级构象第75-76页
 5. 本研究不足之处和今后的工作设想第76-77页
小结第77-78页
参考文献第78-82页
文献综述第82-87页
 参考文献第85-87页
英文名词及缩写第87-88页
致谢第88-89页
个人简历第89-90页

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