中文摘要 | 第1-6页 |
英文摘要 | 第6-16页 |
前言 | 第16-18页 |
第一部分 兔骨髓间充质干细胞的分离、培养、鉴定及体外诱导分化 | 第18-46页 |
·材料与方法 | 第18-29页 |
·实验动物 | 第18页 |
·主要仪器 | 第18-19页 |
·主要试剂 | 第19-20页 |
·实验方法 | 第20-29页 |
·结果 | 第29-39页 |
·兔原代BMSCs的分离、纯化、培养 | 第29-30页 |
·BMSCs的鉴定 | 第30-31页 |
·BMSCs的增殖特性、生长曲线及倍增时间计算 | 第31-33页 |
·BMSCs体外向成骨细胞诱导分化及鉴定 | 第33-36页 |
·BMSCs体外向软骨细胞诱导分化及鉴定 | 第36-39页 |
·讨论 | 第39-45页 |
·组织工程中的种子细胞 | 第39-40页 |
·BMSCs的分离,培养和表面抗原鉴定 | 第40-43页 |
·BMSCs体外诱导分化及目的细胞鉴定 | 第43-45页 |
·结论 | 第45-46页 |
第二部分 PLGA-PCL/PLGA-HA-βTCP双相支架的制备及生物学特性研究 | 第46-59页 |
·材料和方法 | 第46-49页 |
·主要仪器 | 第46-47页 |
·主要材料 | 第47页 |
·实验动物 | 第47-48页 |
·兔BMSCs的分离培养 | 第48页 |
·支架制备 | 第48-49页 |
·支架的各项特性 | 第49页 |
·结构形态观察 | 第49页 |
·生物相容性 | 第49页 |
·生物力学性能 | 第49页 |
·结果 | 第49-53页 |
·结构性能 | 第49-51页 |
·支架与活体组织相容性及体内降解时间 | 第51-52页 |
·生物力学测试 | 第52-53页 |
·讨论 | 第53-58页 |
·双相支架的设计 | 第53-56页 |
·支架的各项特性 | 第56-58页 |
·结论 | 第58-59页 |
第三部分 PLGA-PCL/PLGA-HA-βTCP双相支架复合BMSCs修复兔膝关节骨软骨缺损 | 第59-80页 |
·材料、主要仪器及试剂 | 第59-60页 |
·实验动物 | 第60页 |
·主要仪器 | 第60页 |
·主要试剂 | 第60页 |
·实验方法 | 第60-63页 |
·兔BMSCs的分离、纯化及增殖培养 | 第60-61页 |
·双相PLGA支架的制备 | 第61页 |
·双相PLGA支架与BMSCs细胞复合物制备 | 第61页 |
·动物分组 | 第61页 |
·手术过程 | 第61页 |
·术后处理 | 第61页 |
·修复效果观察及生物力学检测 | 第61-63页 |
·结果 | 第63-74页 |
·大体形态观察 | 第63-64页 |
·组织学观察 | 第64-65页 |
·生物力学测试 | 第65-74页 |
·讨论 | 第74-79页 |
·实验动物模型的建立 | 第74页 |
·种子细胞的选择 | 第74-75页 |
·组织缺损修复效果 | 第75-76页 |
·双相组织工程支架 | 第76-78页 |
·本实验的创新与不足 | 第78-79页 |
·结论 | 第79-80页 |
参考文献 | 第80-101页 |
综述 | 第101-123页 |
致谢 | 第123-124页 |
攻读学位期间主要研究成果 | 第124页 |