| 英文缩略词 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一部分 实验材料和方法 | 第16-26页 |
| 1 实验材料 | 第16-18页 |
| ·实验用细胞株 | 第16页 |
| ·实验主要设备 | 第16-17页 |
| ·实验主要试剂 | 第17-18页 |
| ·实验分组 | 第18页 |
| 2 实验方法 | 第18-26页 |
| ·HUVE-12细胞的培养 | 第19页 |
| ·HUVE-12细胞复苏 | 第19页 |
| ·HUVE-12细胞消化和传代 | 第19页 |
| ·HUVE-12细胞计数和接种 | 第19页 |
| ·蒲黄黄酮对HUVE-12细胞的体外毒性实验 | 第19-21页 |
| ·蒲黄黄酮药液的配置 | 第19-20页 |
| ·细胞接种 | 第20页 |
| ·细胞给药 | 第20页 |
| ·MTT实验 | 第20页 |
| ·蒲黄黄酮最终浓度的确定 | 第20-21页 |
| ·阳性对照药17-β雌二醇最终浓度的确定 | 第21页 |
| ·缺氧装置的建立 | 第21页 |
| ·HUVE-12细胞的常氧培养 | 第21页 |
| ·HUVE-12细胞的缺氧培养 | 第21-22页 |
| ·指标检测及测定 | 第22-25页 |
| ·HUVE-12大体形态的观察 | 第22页 |
| ·HUVE-12缺氧后细胞存活率的测定 | 第22页 |
| ·HUVE-12细胞中NO含量的测定 | 第22-23页 |
| ·HUVE-12细胞中ET-1含量的测定 | 第23-24页 |
| ·HUVE-12细胞中PGI_2含量的测定 | 第24-25页 |
| ·统计学处理 | 第25-26页 |
| 第二部分 实验结果和分析 | 第26-31页 |
| 1 实蒲黄黄酮对HUVE-12体外毒性实验结果 | 第26页 |
| 2 HUVE-12细胞正常与缺氧损伤后大体形态的观察比较 | 第26-27页 |
| 3 蒲黄黄酮对缺氧损伤HUVE-12细胞活性的影响 | 第27-28页 |
| 4 缺氧对HUVE-12细胞中NO含量的影响 | 第28-29页 |
| 5 缺氧对HUVE-12细胞中ET-1含量的影响 | 第29页 |
| 6 缺氧对HUVE-12细胞中PGI_2含量的影响 | 第29-31页 |
| 第三部分 讨论 | 第31-44页 |
| 1 现代医学对血管内皮细胞的认识 | 第31-35页 |
| ·血管内皮细胞的功能和作用 | 第31-32页 |
| ·NO与血管内皮细胞的关系 | 第32-33页 |
| ·内皮素(ET)与血管内皮细胞的关系 | 第33-34页 |
| ·前列环素(PGI_2)与血管内皮细胞的关系 | 第34页 |
| ·血管内皮生长因子(VEGF)与血管内皮细胞的关系 | 第34-35页 |
| 2 现代医学有关雌激素以及植物类雌激素对血管内皮细胞的保护作用研究 | 第35-43页 |
| ·有关雌激素与血管内皮细胞保护作用的认识 | 第35-36页 |
| ·植物雌激素与血管内皮细胞保护作用的认识 | 第36-39页 |
| ·蒲黄黄酮对血管内皮细胞的保护性作用 | 第39-43页 |
| 3 雌激素类药物雌二醇的评价 | 第43页 |
| 4 结语和展望 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 附图 | 第54-55页 |
| 附综述 | 第55-67页 |
| 攻读学位期间主要研究成果及发表论文 | 第67页 |
