| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略语/符号说明 | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-14页 |
| 研究现状、成果 | 第11-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-14页 |
| 1.实验材料 | 第14-18页 |
| 1.1 质粒、菌株、蛋白酶、实验动物 | 第14页 |
| 1.2 实验试剂和所需液体的配制 | 第14-17页 |
| 1.2.1 质粒提取及细菌培养相关试剂与液体配制 | 第14-15页 |
| 1.2.2 蛋白表达、纯化、浓缩所需相关试剂 | 第15页 |
| 1.2.3 SDS-PAGE所需的试剂及液体配制 | 第15-17页 |
| 1.2.4 PCR所需的试剂 | 第17页 |
| 1.3 实验所需的仪器和耗材 | 第17-18页 |
| 2.实验方法 | 第18-29页 |
| 2.1 沙眼衣原体Pgp3蛋白的原核表达、纯化、鉴定、浓缩 | 第18-24页 |
| 2.1.1 质粒的提取 | 第18页 |
| 2.1.2 质粒的转化 | 第18-19页 |
| 2.1.3 表达融合蛋白GST-pgp3 | 第19-20页 |
| 2.1.4 纯化蛋白Pgp3 | 第20-21页 |
| 2.1.5 聚丙烯酰胺凝胶电泳法(SDS-PAGE)鉴定蛋白Pgp3 | 第21-23页 |
| 2.1.6 浓缩蛋白Pgp3 | 第23页 |
| 2.1.7 蛋白Pgp3浓度的检测 | 第23-24页 |
| 2.1.8 蛋白pgp3的稀释 | 第24页 |
| 2.2 动物实验 | 第24-29页 |
| 2.2.1 动物实验的分组 | 第24页 |
| 2.2.2 动物实验的干预过程 | 第24-25页 |
| 2.2.3 小鼠皮损处TSS(Total Sign Score)评分 | 第25-26页 |
| 2.2.4 动物实验的组织病理 | 第26页 |
| 2.2.5 小鼠皮损组织的RT-PCR | 第26-29页 |
| 2.2.5.1 总RNA的提取 | 第26-27页 |
| 2.2.5.2 cDNA第一条链的合成 | 第27-28页 |
| 2.2.5.3 Real-time PCR扩增 | 第28-29页 |
| 2.2.6 统计学处理 | 第29页 |
| 3.实验结果 | 第29-41页 |
| 3.1 重组质粒pGEX-6P-1/Pgp3的鉴定 | 第29-30页 |
| 3.2 蛋白Pgp3的鉴定 | 第30-31页 |
| 3.3 蛋白Pgp3的浓缩鉴定结果 | 第31-32页 |
| 3.4 蛋白对IMQ诱导的小鼠银屑病样皮损的影响 | 第32-36页 |
| 3.5 小鼠TSS的评分 | 第36-38页 |
| 3.6 小鼠模型皮损的组织病理学变化 | 第38-39页 |
| 3.7 PCR的结果及数据分析 | 第39-41页 |
| 4.讨论 | 第41-44页 |
| 4.1 LL-37在银屑病中的作用 | 第41-42页 |
| 4.2 IL-17在银屑病中的作用 | 第42-43页 |
| 4.3 IL-22在银屑病中的作用 | 第43页 |
| 4.4 IFN-γ在银屑病中的作用 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第51-52页 |
| 综述 银屑病发病机制的研究近况 | 第52-64页 |
| 综述参考文献 | 第59-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 个人简历 | 第66页 |
