| 缩略语表 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-14页 |
| ABSTRACT | 第14-19页 |
| 前言 | 第20-22页 |
| 文献回顾 | 第22-42页 |
| 第一部分 低氧对肺循环血管和体循环血管影响 | 第42-55页 |
| 1 材料 | 第42-46页 |
| 1.1 动物 | 第42页 |
| 1.2 主要仪器 | 第42-43页 |
| 1.3 主要试剂及耗材 | 第43-45页 |
| 1.4 主要液体配制 | 第45-46页 |
| 2 实验方法 | 第46-49页 |
| 2.1 动物实验 | 第46页 |
| 2.2 血流动力学检测及标本收集 | 第46-47页 |
| 2.3 右心室肥厚指数的检测 | 第47页 |
| 2.4 肺、肾血管形态学检测 | 第47-48页 |
| 2.5 原代PASMCs和AASMCs培养及鉴定 | 第48-49页 |
| 2.6 细胞增殖实验 | 第49页 |
| 2.7 统计分析 | 第49页 |
| 3 实验结果 | 第49-53页 |
| 3.1 低氧对肺动脉压和体循环压影响 | 第49-50页 |
| 3.2 低氧对右心室肥厚指数影响 | 第50-51页 |
| 3.3 低氧对肺循环和体循环血管结构影响 | 第51-52页 |
| 3.4 原代PASMCs和AASMCs鉴定 | 第52页 |
| 3.5 低氧对PASMCs和AASMCs增殖的影响 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 第二部分 肺泡上皮细胞对PASMCS和AASMCS增殖及PA和AA收缩的影响 | 第55-72页 |
| 1 实验材料 | 第55-59页 |
| 1.1 动物 | 第55页 |
| 1.2 主要仪器 | 第55-56页 |
| 1.3 主要试剂及耗材 | 第56-57页 |
| 1.4 主要液体配制 | 第57-59页 |
| 2 实验方法 | 第59-63页 |
| 2.1 细胞来源 | 第59页 |
| 2.2 原代ATII培养 | 第59-60页 |
| 2.3 原代ATII鉴定 | 第60-61页 |
| 2.4 肺泡上皮细胞与PASMCs或AASMCs共培养 | 第61页 |
| 2.5 肺泡上皮细胞培养上清对PASMCs和AASMCs增殖实验 | 第61页 |
| 2.6 细胞增殖实验 | 第61-62页 |
| 2.7 制备离体PA和AA血管环 | 第62页 |
| 2.8 肺泡上皮细胞培养上清对PA和AA收缩实验 | 第62-63页 |
| 2.9 统计分析 | 第63页 |
| 3 实验结果 | 第63-70页 |
| 3.1 肺泡上皮细胞鉴定结果 | 第63页 |
| 3.2 低氧条件下与肺泡上皮细胞共培养,促进PASMCs或AASMCs增殖 | 第63-64页 |
| 3.3 肺泡上皮细胞低氧培养上清液促进PASMCs或AASMCs增殖 | 第64-65页 |
| 3.4 肺泡上皮细胞低氧培养上清液促进PA或AA收缩 | 第65-70页 |
| 4 讨论 | 第70-72页 |
| 第三部分 低氧对肺泡上皮细胞的影响 | 第72-85页 |
| 1 实验材料 | 第72-74页 |
| 1.1 动物 | 第72页 |
| 1.2 主要仪器 | 第72-73页 |
| 1.3 主要试剂及耗材 | 第73页 |
| 1.4 主要液体配制 | 第73-74页 |
| 2 实验方法 | 第74-78页 |
| 2.1 原代ATII培养 | 第74-75页 |
| 2.2 原代ATII转录组测序 | 第75-77页 |
| 2.3 ROS检测 | 第77页 |
| 2.4 H_2O_2含量的检测 | 第77-78页 |
| 2.5 SOD含量及活力检测 | 第78页 |
| 2.6 统计分析 | 第78页 |
| 3 实验结果 | 第78-82页 |
| 3.1 原代ATII常氧和低氧条件下基因变化情况 | 第78-80页 |
| 3.2 原代ATII差异明显基因QT-PCR验证结果 | 第80-81页 |
| 3.3 低氧促进原代ATII总活性氧(ROS)产生 | 第81-82页 |
| 3.4 原代ATII低氧培养上清中H_2O_2含量增加 | 第82页 |
| 4 讨论 | 第82-85页 |
| 第四部分 肺泡上皮细胞参与低氧性肺动脉高压的机制研究 | 第85-98页 |
| 1 实验材料 | 第85-88页 |
| 1.1 动物 | 第85页 |
| 1.2 主要仪器 | 第85-86页 |
| 1.3 主要试剂及耗材 | 第86页 |
| 1.4 主要液体配制 | 第86-88页 |
| 2 实验方法 | 第88-91页 |
| 2.1 外源性H_2O_2对PASMCs和AASMCs增殖实验 | 第88页 |
| 2.2 外源性H_2O_2对PA和AA收缩实验 | 第88-89页 |
| 2.3 NAC干预外源性H_2O_2对PASMCs和AASMCs增殖实验 | 第89页 |
| 2.4 NAC干预外源性H_2O_2对离体PA和AA收缩实验 | 第89页 |
| 2.5 NAC干预共培养后PASMCs和AASMCs增殖实验 | 第89-90页 |
| 2.6 NAC干预肺泡上皮细胞培养上清液对离体PA和AA收缩实验 | 第90页 |
| 2.7 统计学分析 | 第90-91页 |
| 3 实验结果 | 第91-96页 |
| 3.1 NAC抑制外源性H_2O_2诱导PASMCs和AASMCs增殖 | 第91-92页 |
| 3.2 NAC抑制外源性H_2O_2诱导PA和AA收缩 | 第92-93页 |
| 3.3 NAC抑制共培养后PASMCs和AASMCs增殖 | 第93-94页 |
| 3.4 NAC抑制肺泡上皮细胞培养上清对离体PA和AA收缩 | 第94-96页 |
| 4 讨论 | 第96-98页 |
| 小结 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-115页 |
| 个人简历和研究成果 | 第115-117页 |
| 致谢 | 第117页 |
