| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-21页 |
| 1.1 多环芳烃简述 | 第13-15页 |
| 1.1.1 土壤PAHs的来源及修复途径 | 第14-15页 |
| 1.2 PAHs微生物降解机制 | 第15-16页 |
| 1.2.1 萘、菲的好氧微生物降解机制 | 第15-16页 |
| 1.2.2 萘、菲的厌氧微生物降解机制 | 第16页 |
| 1.3 PAHs在反硝化条件下的降解 | 第16-18页 |
| 1.3.1 反硝化过程 | 第16-17页 |
| 1.3.2 反硝化条件下PAHs厌氧降解菌 | 第17-18页 |
| 1.4 反硝化过程在土壤PAHs自然衰减中的作用 | 第18-21页 |
| 第2章 绪论 | 第21-25页 |
| 2.1 研究目的与意义 | 第21页 |
| 2.2 研究内容 | 第21-22页 |
| 2.3 研究特色与创新 | 第22-23页 |
| 2.4 技术路线 | 第23-25页 |
| 第3章 萘、菲反硝化降解菌群的富集及其群落结构解析 | 第25-35页 |
| 3.1 材料与方法 | 第25-27页 |
| 3.1.1 土壤样品的采集及反硝化降解菌群的富集 | 第25-26页 |
| 3.1.2 萘、菲的提取及浓度测定 | 第26页 |
| 3.1.3 富集菌群DNA的提取及基因narG及nirS的定量PCR | 第26-27页 |
| 3.1.4 IlluminaMiSeq测序 | 第27页 |
| 3.1.5 数据分析 | 第27页 |
| 3.2 结果与分析 | 第27-33页 |
| 3.2.1 反硝化降解菌群的萘、菲降解率 | 第27-28页 |
| 3.2.2 富集菌群中narG和nirS基因的丰度 | 第28-29页 |
| 3.2.3 富集菌群微生物多样性 | 第29-33页 |
| 3.3 讨论 | 第33-34页 |
| 3.4 小结 | 第34-35页 |
| 第4章 反硝化菌群的萘代谢与反硝化偶联机制 | 第35-41页 |
| 4.1 材料与方法 | 第35-36页 |
| 4.1.1 土壤萘反硝化降解菌群的再培养 | 第35页 |
| 4.1.2 萘的提取和测定 | 第35页 |
| 4.1.3 硝酸根、亚硝酸根及气体浓度的测定 | 第35-36页 |
| 4.1.4 DNA的提取及narG、nirS的定量PCR | 第36页 |
| 4.1.5 数据处理与分析 | 第36页 |
| 4.2 结果与分析 | 第36-38页 |
| 4.2.1 富集菌群萘降解率及降解速率的动态变化 | 第36-37页 |
| 4.2.2 萘降解过程中NO_3~-、NO_2~-浓度及气体(N_2O和N_2)产生速率的动态变化 | 第37页 |
| 4.2.3 萘降解过程中narG及nirS丰度的动态变化 | 第37-38页 |
| 4.3 讨论 | 第38-39页 |
| 4.4 小结 | 第39-41页 |
| 第5章 DMPP对旱地及淹水土壤菲去除及氨氧化、反硝化的比较研究 | 第41-51页 |
| 5.1 材料与方法 | 第41-43页 |
| 5.1.1 供试土壤及培养实验设置 | 第41-42页 |
| 5.1.2 土壤中NH_4~+、NO_3~-含量的测定 | 第42页 |
| 5.1.3 土壤菲含量测定 | 第42页 |
| 5.1.4 土壤氨氧化潜势(PNR)及反硝化活性的(DEA)的测定 | 第42-43页 |
| 5.1.5 土壤DNA的提取及相关功能基因的定量PCR | 第43页 |
| 5.1.6 数据处理与分析 | 第43页 |
| 5.2 结果与分析 | 第43-49页 |
| 5.2.1 培养期间旱地及淹水土壤中NH_4~+和NO_3~-含量的动态变化 | 第43-44页 |
| 5.2.2 添加DMPP对旱地及淹水土壤菲降解率的影响 | 第44页 |
| 5.2.3 DMPP对旱地及淹水土壤氨氧化潜势-PNR及反硝化活性-DEA的影响 | 第44-46页 |
| 5.2.4 土壤中反硝化、氨氧化功能基因丰度变化 | 第46-49页 |
| 5.3 讨论 | 第49-50页 |
| 5.4 小结 | 第50-51页 |
| 第6章 结论与展望 | 第51-53页 |
| 6.1 主要结论 | 第51-52页 |
| 6.2 展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 致谢 | 第61-63页 |
| 发表论文及参加课题 | 第63页 |
