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玉米ZmLTP3基因上游调控因子的筛选及验证

摘要第4-5页
Abstract第5-6页
第1章 绪论第11-19页
    1.1 引言第11页
    1.2 植物转脂蛋白概述第11-14页
        1.2.1 植物转脂蛋白结构和分类第11-12页
        1.2.2 植物脂转运蛋白基因的表达调控第12页
        1.2.3 植物脂转运蛋白的生物学功能第12-14页
            1.2.3.1 参与蜡质的合成与运输第12-13页
            1.2.3.2 提高植物抗生物胁迫的能力第13-14页
    1.3 转录因子概述第14-15页
        1.3.1 转录因子的结构第14-15页
            1.3.1.1 DNA结合结构域第14-15页
        1.3.2 植物转录因子分类第15页
    1.4 DNA与蛋白质互作的研究方法第15-18页
        1.4.1 DNA足迹法第16页
        1.4.2 双荧光素酶法第16页
        1.4.3 凝胶迁移实验第16-17页
        1.4.4 染色质免疫沉淀技术第17页
        1.4.5 酵母单杂交技术第17-18页
        1.4.6 DNA与蛋白质互作技术研究进展第18页
    1.5 研究目的及意义第18-19页
第2章 ZmLTP3基因核心启动子区域的鉴定第19-33页
    2.1 试验材料第19-21页
        2.1.1 植物材料第19页
        2.1.2 试验菌株和载体第19页
        2.1.3 主要仪器和试剂第19-20页
        2.1.4 主要溶液配方第20-21页
    2.2 试验方法第21-27页
        2.2.1 植物表达载体的构建第21-23页
            2.2.1.1 ZmLTP3基因上游启动子的分段扩增第21-22页
            2.2.1.2 分段扩增的ZmLTP3基因上游启动子的纯化与回收第22页
            2.2.1.3 分段扩增的ZmLTP3基因上游启动子序列和载体双酶切第22页
            2.2.1.4 目的片段和表达载体的纯化与回收第22页
            2.2.1.5 植物表达载体的构建第22-23页
        2.2.2 植物表达载体转化大肠杆菌TOP10第23页
        2.2.3 植物表达载体的提取第23页
        2.2.4 植物表达载体的酶切验证第23-24页
        2.2.5 农杆菌介导法侵染拟南芥第24-27页
            2.2.5.1 拟南芥植株的准备第24页
            2.2.5.2 农杆菌感受态的制备第24-25页
            2.2.5.3 电击法转化农杆菌感受态细胞第25页
            2.2.5.4 农杆菌PCR验证第25页
            2.2.5.5 农杆菌的集菌与侵染液的配制第25页
            2.2.5.6 农杆菌侵染拟南芥第25-26页
            2.2.5.7 转基因拟南芥种子的筛选第26页
            2.2.5.8 转基因拟南芥DNA的提取第26页
            2.2.5.9 转基因拟南芥的PCR鉴定第26-27页
        2.2.6 拟南芥GUS染色活性分析第27页
    2.3 试验结果与分析第27-32页
        2.3.1 ZmzLTP3基因上游启动子的分段扩增结果第27-29页
        2.3.2 植物表达载体的构建第29-30页
        2.3.3 转基因拟南芥种子的筛选及PCR鉴定第30-31页
        2.3.4 拟南芥GUS染色活性分析第31-32页
    2.4 讨论第32-33页
第3章 诱饵质粒的构建第33-38页
    3.1 试验材料第33页
        3.1.1 试验菌株和载体第33页
        3.1.2 主要试剂和仪器设备第33页
        3.1.3 主要溶液配方第33页
    3.2 试验方法第33-35页
        3.2.1 目的片段的获得第33页
            3.2.1.1 PCR获得目的片段第33页
            3.2.1.2 PCR产物的纯化回收第33页
        3.2.2 诱饵质粒的构建第33-35页
            3.2.2.1 目的片段和诱饵载体(pHIS2质粒)双酶切第33-34页
            3.2.2.2 目的片段和诱饵载体的纯化与回收第34页
            3.2.2.3 诱饵载体的构建第34-35页
            3.2.2.4 诱饵质粒转化大肠杆菌TOP10第35页
            3.2.2.5 诱饵质粒的提取第35页
            3.2.2.6 诱饵质粒的鉴定第35页
    3.3 试验结果及分析第35-37页
        3.3.1 目的片段的扩增第35页
        3.3.2 目的片段和pHIS2质粒双酶切第35-36页
        3.3.3 诱饵质粒双酶切验证第36-37页
    3.4 讨论第37-38页
第4章 文库质粒的构建第38-47页
    4.1 试验材料第38页
        4.1.1 植物材料第38页
        4.1.2 试验菌株和载体第38页
        4.1.3 主要试剂和仪器设备第38页
        4.1.4 主要溶液配方第38页
    4.2 试验方法第38-43页
        4.2.1 实验材料的获得第38-39页
        4.2.2 玉米RNA的提取第39页
        4.2.3 mRNA的分离第39页
        4.2.4 cDNA文库的构建第39-41页
            4.2.4.1 cDNA第一条链的合成第39-41页
            4.2.4.2 cDNA第二链的合成第41页
        4.2.5 加5'接头(3个读码框,每个读码框连接一份,共3份)第41-42页
        4.2.6 胶回收目的长度的cDNA片段(三个读码框产物合并进行)第42页
        4.2.7 cDNA与载体的连接第42页
        4.2.8 电转化大肠杆菌感受态细胞(每2.5ul的重组质粒转化50ul感受态细胞)第42-43页
        4.2.9 酵母单杂交文库的构建文库质量鉴定第43页
            4.2.9.1 库容量的鉴定第43页
            4.2.9.2 插入片段大小鉴定第43页
        4.2.10 酵母单杂交文库的质粒抽提第43页
    4.3 试验结果及分析第43-45页
        4.3.1 RNA的提取第43-44页
        4.3.2 mRNA的分离第44-45页
        4.3.3 酵母单杂交文库的构建文库质量鉴定第45页
    4.4 讨论第45-47页
第5章 酵母单杂交筛库第47-59页
    5.1 试验材料第47-49页
        5.1.1 试验菌株和载体第47页
        5.1.2 主要试剂和仪器设备第47页
        5.1.3 主要溶液配方第47-49页
    5.2 试验方法第49-52页
        5.2.1 酵母的转化反应第49页
        5.2.2 酵母感受态制备及转化方法第49-50页
        5.2.3 酵母的自激活检测第50页
        5.2.4 酵母单杂交筛库第50-51页
        5.2.5 阳性克隆PCR鉴定第51页
        5.2.6 酵母阳性克隆质粒的提取和测序比对第51-52页
            5.2.6.1 酵母阳性克隆质粒的提取第51-52页
            5.2.6.2 酵母阳性克隆质粒测序比对第52页
            5.2.6.3 酵母阳性克隆的生物信息学分析第52页
    5.3 试验结果与分析第52-57页
        5.3.1 酵母感受态的制备及转化第52-53页
        5.3.2 酵母自激活检测第53页
        5.3.3 酵母单杂交筛库第53-54页
        5.3.4 酵母阳性克隆质粒测序比对第54-55页
        5.3.5 酵母阳性克隆的生物信息学分析第55-57页
    5.4 讨论第57-59页
第6章 ZmLSDI蛋白的诱导表达及SDS-PAGE电泳检测第59-66页
    6.1 试验材料第59-60页
        6.1.1 试验菌株和载体第59页
        6.1.2 主要试剂和仪器设备第59页
        6.1.3 主要溶液配方第59-60页
    6.2 试验方法第60-62页
        6.2.1 ZmLSD1蛋白的原核诱导表达第60页
        6.2.2 SDS-PAGE胶的制备第60-61页
        6.2.3 ZmLSD1蛋白的SDS-PAGE电泳检测第61-62页
        6.2.4 ZmLSD1蛋白的可溶性检测第62页
    6.3 试验结果与分析第62-64页
        6.3.1 ZmLSD1蛋白的SDS-PAGE电泳检测第62-63页
        6.3.2 ZmLSD1蛋白的可溶性鉴定第63-64页
    6.4 讨论第64-66页
第7章 结论与展望第66-67页
致谢第67-68页
参考文献第68-73页
个人简介第73-74页

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