| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第10-20页 |
| 1.1 引言 | 第10页 |
| 1.2 多糖的研究 | 第10-12页 |
| 1.2.1 多糖的结构分析 | 第10-11页 |
| 1.2.2 多糖的提取方法 | 第11-12页 |
| 1.3 黑木耳多糖的研究 | 第12-14页 |
| 1.3.1 黑木耳多糖的生理功能 | 第12-14页 |
| 1.4 多糖分离纯化方法 | 第14-16页 |
| 1.4.1 除蛋白 | 第14-15页 |
| 1.4.2 脱色 | 第15页 |
| 1.4.3 分级沉淀和分步沉淀 | 第15页 |
| 1.4.4 色谱分离 | 第15-16页 |
| 1.4.5 膜分离法 | 第16页 |
| 1.5 多糖硫酸酯化衍生物的制备 | 第16-17页 |
| 1.6 铬的生物活性 | 第17-18页 |
| 1.6.1 铬与糖尿病的关系 | 第17页 |
| 1.6.2 铬及其配合物降血糖功能的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.7 黑木耳多糖螯合的研究进展 | 第18页 |
| 1.8 论文课题的目的与意义 | 第18-19页 |
| 1.9 本课题研究的内容及方法 | 第19-20页 |
| 2 黑木耳多糖中α-葡萄糖苷酶活性抑制片段的筛选 | 第20-27页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第20-21页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第20-21页 |
| 2.2.2 试验仪器 | 第21页 |
| 2.3 试验方法 | 第21-24页 |
| 2.3.1 黑木耳多糖提取、分离纯化 | 第21-22页 |
| 2.3.2 主要成分测定方法 | 第22-24页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第24-26页 |
| 2.4.1 不同活性黑木耳多糖对α-葡萄糖苷酶活性的筛选 | 第24页 |
| 2.4.2 乙醇分级的黑木耳酸性多糖片段对α-葡萄糖苷酶活性的筛选 | 第24-25页 |
| 2.4.3 黑木耳酸性多糖的离子交换层析分级片段对α-葡萄糖苷酶活性的筛选 | 第25页 |
| 2.4.4 不同NaCl洗脱的黑木耳酸性多糖片段对α-葡萄糖苷酶活性的筛选 | 第25-26页 |
| 2.5 本章小结 | 第26-27页 |
| 3 硫酸酯化黑木耳酸性多糖(SAP)的制备工艺 | 第27-40页 |
| 3.1 引言 | 第27页 |
| 3.2 试验材料与仪器 | 第27-28页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第27-28页 |
| 3.2.2 仪器设备 | 第28页 |
| 3.3 试验方法 | 第28-29页 |
| 3.3.1 黑木耳酸性多糖(AAP)的制备 | 第28页 |
| 3.3.2 硫酸酯化试剂的制备 | 第28页 |
| 3.3.3 硫酸酯化黑木耳酸性多糖(SAP)的制备 | 第28-29页 |
| 3.3.4 取代度测定(DS) | 第29页 |
| 3.3.5 取代度的优化试验设计 | 第29页 |
| 3.4 硫酸酯化黑木耳酸性多糖红外光谱分析(IR) | 第29-30页 |
| 3.5 结果与分析 | 第30-37页 |
| 3.5.1 单因素条件的确定 | 第30-33页 |
| 3.5.2 Plackeet-Burman试验设计及结果 | 第33-34页 |
| 3.5.3 最陆爬坡试验设计(Steepest ascent design)及结果 | 第34页 |
| 3.5.4 中心组合试验设计(CCD)及其相应结果分析 | 第34-37页 |
| 3.5.5 试验验证 | 第37页 |
| 3.6 红外光谱分析 | 第37-38页 |
| 3.7 本章小结 | 第38-40页 |
| 4 响应面法优化硫酸酯化黑木耳酸性多糖与三价铬螯合工艺参数 | 第40-53页 |
| 4.1 引言 | 第40页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第40-41页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第40页 |
| 4.2.2 试验仪器 | 第40-41页 |
| 4.3 试验方法 | 第41-42页 |
| 4.3.1 黑木耳酸性多糖的制备 | 第41页 |
| 4.3.2 硫酸酯化黑木耳酸性多糖(SAP)的制备 | 第41页 |
| 4.3.3 SAP-Cr(Ⅲ)螯合物的合成与螯合率的测定 | 第41-42页 |
| 4.3.4 三价铬标准曲线的绘制 | 第42页 |
| 4.3.5 螯合率的优化试验设计 | 第42页 |
| 4.4 SAP-Cr螯合物红外光谱分析(IR) | 第42页 |
| 4.5 结果与分析 | 第42-51页 |
| 4.5.1 单因素试验结果 | 第42-46页 |
| 4.5.2 Plackeet-Burman试验设计及结果 | 第46-47页 |
| 4.5.3 最陆爬坡试验设计(Steepest ascent design)及结果 | 第47页 |
| 4.5.4 中心组合试验设计(CCD)及其相应结果分析 | 第47-51页 |
| 4.5.5 验证试验 | 第51页 |
| 4.6 红外光谱分析 | 第51页 |
| 4.7 结论 | 第51-53页 |
| 5 AAP与SAP-Cr对糖尿病小鼠生理功能的影响 | 第53-76页 |
| 5.1 引言 | 第53页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第53-54页 |
| 5.2.1 试验材料 | 第53页 |
| 5.2.2 试验仪器 | 第53-54页 |
| 5.3 试验方法 | 第54-58页 |
| 5.3.1 受试物的制备 | 第54页 |
| 5.3.2 试验用药及动物 | 第54页 |
| 5.3.3 血清及组织匀浆的制备 | 第54-55页 |
| 5.3.4 试验数据的测定方法 | 第55-57页 |
| 5.3.5 数据统计与分析 | 第57-58页 |
| 5.4 试验结果与分析 | 第58-74页 |
| 5.4.1 受试物对小鼠成长发育及体重的影响 | 第58-59页 |
| 5.4.2 对小鼠脏器指数的影响 | 第59-60页 |
| 5.4.3 受试物对糖尿病小鼠糖代谢的影响 | 第60-62页 |
| 5.4.4 受试物对糖尿病小鼠抗氧化能力的影响 | 第62-66页 |
| 5.4.5 受试物对糖尿病小鼠的抗疲劳作用 | 第66-71页 |
| 5.4.6 对琥珀酸脱氢酶(SDH)的影响 | 第71-73页 |
| 5.4.7 对己糖激酶(HK)的影响 | 第73-74页 |
| 5.5 本章小结 | 第74-76页 |
| 结论 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-88页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
