| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-20页 |
| 1.1 番茄类胡萝卜素合成代谢途径 | 第11-12页 |
| 1.2 番茄类胡萝卜素合成代谢途径上研究的热点 | 第12-16页 |
| 1.2.1 番茄八氢番茄红素合成酶的研究 | 第12-13页 |
| 1.2.2 番茄中胡萝卜素脱饱和酶和异构酶的研究 | 第13-14页 |
| 1.2.3 番茄中番茄红素环化酶的研究 | 第14-16页 |
| 1.3 番茄不同颜色果实中类胡萝卜素合成代谢途径的研究 | 第16页 |
| 1.4 番茄基因工程技术的研究 | 第16-19页 |
| 1.4.1 番茄转基因技术的研究 | 第17页 |
| 1.4.2 番茄基因瞬时表达技术的研究 | 第17-19页 |
| 1.5 本试验的目的意义和内容 | 第19-20页 |
| 第二章 试验材料和方法 | 第20-27页 |
| 2.1 试验材料 | 第20页 |
| 2.1.1 番茄材料 | 第20页 |
| 2.1.2 质粒和菌株 | 第20页 |
| 2.2 试验方法 | 第20-27页 |
| 2.2.1 组成型干扰载体 pBI121-B1B2 的构建 | 第20-22页 |
| 2.2.2 果实特异型干扰载体 E8-pBI121-B1B2 的构建 | 第22-23页 |
| 2.2.3 番茄 LYC-B RNA 干扰载体在不同番茄材料中的有效性验证 | 第23-24页 |
| 2.2.4 农杆菌介导的叶盘转化法的优化 | 第24-25页 |
| 2.2.5 果实注射转化法的研究 | 第25-27页 |
| 第三章 试验结果与分析 | 第27-46页 |
| 3.1 番茄 LYC-B 组成型和果实特异型 RNA 干扰载体的构建 | 第27-30页 |
| 3.1.1 E8，LYC-B1，LYC-B2 的克隆 | 第27页 |
| 3.1.2 组成型表达载体 pBI121-B1B2 的构建 | 第27-29页 |
| 3.1.3 果实特异型表达载体 E8-pBI121-B1B2 的构建 | 第29-30页 |
| 3.2 LYC-B 干扰载体在番茄不同组织中表达差异性研究 | 第30-32页 |
| 3.2.1 E8-pBI121 在番茄不同颜色果实中的表达分析 | 第30页 |
| 3.2.2 pBI121-B1B2 和 E8-pBI121-B1B2 在番茄不同部位的表达分析 | 第30-32页 |
| 3.3 农杆菌介导的叶盘转化法体系的优化 | 第32-33页 |
| 3.3.1 下胚轴和子叶农杆菌侵染浓度和时间的优化 | 第32页 |
| 3.3.2 农杆菌共培养时间的优化 | 第32-33页 |
| 3.3.3 小结 | 第33页 |
| 3.4 果实注射转化法体系的优化 | 第33-45页 |
| 3.4.1 不同注射时期和注射量对坐果率和结种数的影响 | 第33-37页 |
| 3.4.2 不同注射时期收获的种子的卡那霉素筛选 | 第37-41页 |
| 3.4.3 不同注射量收获种子的卡那霉素筛选 | 第41-43页 |
| 3.4.4 不同注射时期和注射量对转化的影响 | 第43-45页 |
| 3.5 果实注射转化法转基因植株的鉴定 | 第45-46页 |
| 第四章 结论 | 第46-47页 |
| 第五章 讨论 | 第47-49页 |
| 5.1 pBI121-B1B2 和 E8-pBI121-B1B2 表达部位差异性分析 | 第47页 |
| 5.2 农杆菌介导的遗传转化 | 第47-48页 |
| 5.3 果实注射转化法遗传转化 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 附件 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 作者简介 | 第57页 |
