磷脂酸(PA)对海马神经元的影响
摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-12页 |
常用缩略语表 | 第12-13页 |
第一章 综述 | 第13-23页 |
·海马简介 | 第13-14页 |
·海马的结构 | 第13页 |
·海马神经元的研究热点 | 第13-14页 |
·海马神经元细胞凋亡 | 第14页 |
·Caspase-3 凋亡酶 | 第14页 |
·可诱导海马神经元凋亡的药物 | 第14-15页 |
·放线菌素D | 第14-15页 |
·亚硝酸钠 | 第15页 |
·磷脂 | 第15-19页 |
·磷脂的结构及分类 | 第15-16页 |
·磷脂的生理功能及其研究进展 | 第16-18页 |
·促进神经传导,增强大脑功能 | 第17页 |
·人体磷脂比例的变化与某些疾病相关联 | 第17-18页 |
·磷脂酸的生理作用 | 第18-19页 |
·钙离子简介 | 第19-21页 |
·钙稳态 | 第19-20页 |
·钙超载 | 第20-21页 |
·线粒体异常 | 第20-21页 |
·酶异常 | 第21页 |
·氧化异常 | 第21页 |
·Fluo3-AM 钙离子荧光染料 | 第21-22页 |
·论文设计思想 | 第22-23页 |
第二章 大鼠乳鼠海马神经元的原代培养 | 第23-26页 |
·实验材料 | 第23-24页 |
·实验动物 | 第23页 |
·仪器及设备 | 第23页 |
·药品与试剂 | 第23页 |
·主要试剂的配制 | 第23-24页 |
·海马神经元的原代培养 | 第24-25页 |
·铺板 | 第24页 |
·海马神经元培养 | 第24-25页 |
·海马神经元的形态学观察 | 第25页 |
·小结 | 第25-26页 |
第三章 能提高胞内钙浓度的磷脂酸最佳浓度 | 第26-32页 |
·实验材料 | 第26页 |
·仪器与设备 | 第26页 |
·药品与试剂 | 第26页 |
·主要试剂的配制 | 第26页 |
·实验分组 | 第26-27页 |
·Fluo3-AM 染色 | 第26-27页 |
·PA 不同浓度分组 | 第27页 |
·实验结果 | 第27-31页 |
·统计学处理 | 第27页 |
·不同浓度PA 作用效果 | 第27-31页 |
·PA 作用后的钙离子荧光曲线 | 第27-30页 |
·PA 作用后的钙离子荧光强度 | 第30-31页 |
小结 | 第31-32页 |
第四章 磷脂酸(PA)的促凋亡研究 | 第32-47页 |
·放线菌素实验组 | 第32-40页 |
·实验材料 | 第32-33页 |
·仪器与设备 | 第32页 |
·药品与试剂 | 第32页 |
·主要试剂的配制 | 第32-33页 |
·实验分组 | 第33页 |
·放线菌素D 不同浓度分组 | 第33页 |
·放线菌素D 不同时间分组 | 第33页 |
·PA 促制细胞凋亡分组 | 第33页 |
·凋亡检测 | 第33-34页 |
·吖啶橙染色检测细胞凋亡率 | 第33-34页 |
·Caspase-3凋亡酶活性 | 第34页 |
·钙离子荧光强度检测 | 第34页 |
·统计学处理 | 第34页 |
·实验结果 | 第34-39页 |
·细胞凋亡的形态学 | 第34-37页 |
·吖啶橙染色检测细胞凋亡率 | 第34-37页 |
·Caspase-3凋亡酶活性 | 第37-38页 |
·不同处理后Ca~(2+)荧光强度变化 | 第38-39页 |
·小结 | 第39-40页 |
·亚硝酸钠组 | 第40-46页 |
·实验材料 | 第40页 |
·仪器与设备 | 第40页 |
·药品与试剂 | 第40页 |
·主要试剂的配制 | 第40页 |
·实验分组 | 第40-41页 |
·亚硝酸钠不同浓度分组 | 第40页 |
·亚硝酸钠不同时间分组 | 第40-41页 |
·PA 促制细胞凋亡分组 | 第41页 |
·凋亡检测 | 第41页 |
·钙离子荧光强度检测 | 第41页 |
·统计学处理 | 第41页 |
·实验结果 | 第41-45页 |
·细胞凋亡的形态学 | 第41-43页 |
·吖啶橙染色检测细胞凋亡率 | 第41-43页 |
·Caspase-3凋亡酶活性 | 第43-44页 |
·不同处理后 Ca2+荧光强度变化 | 第44-45页 |
·小结 | 第45-46页 |
·总结 | 第46-47页 |
第五章 结论 | 第47-48页 |
讨论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
发表文章 | 第56页 |