中文摘要 | 第8-11页 |
英文摘要 | 第11-14页 |
前言 | 第15-17页 |
材料和方法 | 第17-26页 |
1. 材料 | 第17-19页 |
1.1 实验菌株 | 第17页 |
1.2 实验动物 | 第17页 |
1.3 主要实验用品及试剂 | 第17-18页 |
1.4 主要实验仪器 | 第18-19页 |
2. 方法 | 第19-26页 |
2.1 分组与造模 | 第19页 |
2.2 样本采集 | 第19页 |
2.3 肝脏组织HE染色 | 第19-20页 |
2.4 血液样本检测Glu、UA、TG、T-CHO、LDL-C、ALT水平 | 第20页 |
2.5 ELISA(酶联免疫吸附)实验 | 第20页 |
2.6 RT-qPCR方法检测各组小鼠肝脏组织中XOD、NOX4的表达 | 第20-22页 |
2.7 肠道菌群多样性检测 | 第22-24页 |
2.8 16SrDNA高通量测序 | 第24-25页 |
2.9 统计学分析 | 第25-26页 |
结果 | 第26-38页 |
1. 短乳杆菌DM9505对高果糖饮食诱导的血尿酸及糖脂代谢的影响 | 第26-29页 |
1.1 各组小鼠体重及血糖变化 | 第26页 |
1.2 各组小鼠血液中血脂水平的变化 | 第26-27页 |
1.3 各组小鼠肝功能指标变化及病理改变 | 第27-28页 |
1.4 各组小鼠血尿酸、TGF-β1、NOX4mRNA及ROS水平比较改变 | 第28-29页 |
2. 短乳杆菌DM9505对高果糖喂养小鼠尿酸生成的果糖代谢机制的影响 | 第29-31页 |
3. 短乳杆菌DM9505对高果糖喂养小鼠尿酸生成的调节机制的影响 | 第31-32页 |
4. 短乳杆菌DM9505对高果糖诱导的高血尿酸小鼠肠道菌群的调节作用 | 第32-38页 |
讨论 | 第38-40页 |
结论 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-46页 |
综述 | 第46-62页 |
参考文献 | 第53-62页 |
攻读学位期间发表文章情况 | 第62-63页 |
致谢 | 第63-64页 |