| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩写词 | 第8-12页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-19页 |
| 1.1 成纤维细胞生长因子 21 | 第12-16页 |
| 1.1.1 成纤维细胞生长因子 21 概述 | 第12-13页 |
| 1.1.2 成纤维细胞生长因子 21 的生理作用 | 第13-15页 |
| 1.1.3 成纤维细胞生长因子 21 与临床疾病的相关研究 | 第15-16页 |
| 1.2 对乙酰氨基酚引发的急性肝功能衰竭 | 第16-19页 |
| 1.2.1 对乙酰氨基酚引发的急性肝功能衰竭概述 | 第16页 |
| 1.2.2 对乙酰氨基酚在机体的代谢 | 第16-17页 |
| 1.2.3 对乙酰氨基酚引发的急性肝功能衰竭的相关机制 | 第17-19页 |
| 第2章 材料与方法 | 第19-34页 |
| 2.1 主要试剂和器材 | 第19-21页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.2 器材 | 第20页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 实验动物 | 第21页 |
| 2.3 急性肝功能衰竭（ALF）动物模型构建及分组处理 | 第21-22页 |
| 2.3.1 急性肝功能衰竭（ALF）动物模型构建方法 | 第21-22页 |
| 2.3.2 实验分组及处理 | 第22页 |
| 2.4 样品的分离和制备 | 第22-23页 |
| 2.5 血清 ALT 和 AST 检测 | 第23-24页 |
| 2.6 形态学检测 | 第24-25页 |
| 2.6.1 肝脏组织包埋和切片 | 第24页 |
| 2.6.2 HE 染色 | 第24-25页 |
| 2.7 组织蛋白提取及浓度检测 | 第25-26页 |
| 2.7.1 组织总蛋白提取 | 第25页 |
| 2.7.2 BCA 法测蛋白浓度 | 第25-26页 |
| 2.8 肝脏 ROS 水平检测 | 第26-27页 |
| 2.8.1 ROS 检测原理 | 第26页 |
| 2.8.2 ROS 检测步骤 | 第26-27页 |
| 2.9 肝脏 MDA 水平检测 | 第27-28页 |
| 2.9.1 MDA 检测原理 | 第27页 |
| 2.9.2 MDA 检测步骤 | 第27-28页 |
| 2.10 血清及组织 FGF21 蛋白水平检测 | 第28-29页 |
| 2.11 Western Blotting 方法检测肝脏组织蛋白变化 | 第29-31页 |
| 2.11.1 配制上样体系 | 第29页 |
| 2.11.2 SDS-PAGE 电泳 | 第29页 |
| 2.11.3 转膜 | 第29-30页 |
| 2.11.4 封闭 | 第30页 |
| 2.11.5 抗体孵育 | 第30页 |
| 2.11.6 检测 | 第30-31页 |
| 2.12 Q-PCR 检测组织 mRNA 变化 | 第31-33页 |
| 2.12.1 RNA 的提取 | 第31页 |
| 2.12.2 逆转录 | 第31-32页 |
| 2.12.3 Q-PCR 检测 | 第32-33页 |
| 2.13 统计学分析 | 第33-34页 |
| 第3章 实验结果 | 第34-44页 |
| 3.1 APAP 处理对内源性 FGF21 表达的影响 | 第34-36页 |
| 3.2 FGF21 基因缺失后的影响 | 第36-40页 |
| 3.3 外源性 FGF21 蛋白对 APAP 处理鼠的影响 | 第40-44页 |
| 第4章 讨论 | 第44-48页 |
| 4.1 ALF 小鼠模型的建立 | 第44页 |
| 4.2 APAP 处理影响内源性 FGF21 的表达和分泌 | 第44-45页 |
| 4.3 FGF21 基因缺失加剧肝脏的损伤程度 | 第45-46页 |
| 4.4 外源 FGF21 蛋白能减轻肝脏的损伤程度 | 第46-48页 |
| 第5章 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
