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非诺贝特通过抑制TLR-4/NF-κB信号通路来抑制眼部炎症

内容提要第4-5页
中文摘要第5-7页
ABSTRACT第7-10页
第一章 引言第15-17页
    1.1 Toll 样受体第15页
    1.2 非诺贝特第15页
    1.3 过氧化物酶体增生物激活剂-а第15-16页
    1.4 内毒素诱导的葡萄膜炎第16页
    1.5 立题意义与研究内容第16-17页
第二章 非诺贝特在 EIU 大鼠模型上抑制 LPS 诱导的眼部炎症第17-27页
    2.1 引言第17页
    2.2 材料与仪器第17页
        2.2.1 动物第17页
        2.2.2 试剂与器材第17页
    2.3 实验方法第17-19页
        2.3.1 动物第17-18页
        2.3.2 EIU 大鼠模型的诱导第18页
        2.3.3 EIU 症状的临床指标检测第18页
        2.3.4 前房水细胞渗漏检测第18页
        2.3.5 前房水蛋白质浓度检测第18页
        2.3.6 EIU 症状的组织学检测第18-19页
        2.3.7 视网膜电图(ERG)检测第19页
    2.4 结果与讨论第19-26页
        2.4.1 非诺贝特显著降低眼部炎症评价参数第19-20页
        2.4.2 非诺特备降低眼前段血管增生第20页
        2.4.3 非诺贝特抑制眼前段细胞渗漏第20-21页
        2.4.4 非诺贝特抑制眼前段蛋白渗漏第21-22页
        2.4.5 非诺贝特抑制眼前段虹膜内 VEGF 的表达第22页
        2.4.6 非诺贝特抑制眼后段细胞渗漏第22-23页
        2.4.7 非诺贝特降低视网膜血管白细胞滞留第23-24页
        2.4.8 非诺贝特眼后段 VEGF 和 MCP-1 表达第24-25页
        2.4.9 非诺贝特能够影响视杆和视锥得得电生理反应第25-26页
    2.5 本章小结第26-27页
第三章 非诺贝特抑制 TLR4/NF-κB 信号通路第27-35页
    3.1 引言第27页
    3.2 材料与仪器第27页
        3.2.1 细胞第27页
        3.2.2 动物第27页
        3.2.3 试剂与器材第27页
    3.3 实验方法第27-28页
        3.3.1 细胞培养第27页
        3.3.2 Western blot 分析第27-28页
        3.3.3 免疫组化染色第28页
    3.4 结果与讨论第28-34页
        3.4.1 非诺贝特抑制 RPE 细胞中炎症因子的含量第28-29页
        3.4.2 非诺贝特抑制 NF-κB 的磷酸化第29-30页
        3.4.3 非诺贝特抑制 NF-κB 的核转运第30-31页
        3.4.4 非诺贝特抑制 NF-κB 活性第31页
        3.4.5 菲诺贝特抑制 TLR4 的表达第31-33页
        3.4.6 非诺贝特一直 TLR4/NF-κB 信号通路第33-34页
    3.5 本章小结第34-35页
第四章 非诺贝特的抗炎作用依赖于 PPARа第35-44页
    4.1 引言第35页
    4.2 材料与仪器第35页
        4.2.1 细胞第35页
        4.2.2 动物第35页
        4.2.3 试剂与器材第35页
    4.3 实验方法第35-36页
        4.3.1 细胞培养第35-36页
        4.3.2 原代细胞培养第36页
        4.3.3 Western blot 分析第36页
    4.4 实验结果第36-43页
        4.4.1 在 PPARа-/-细胞中,非诺贝特时失去抗炎作用第36-38页
        4.4.2 非诺贝特通过激活 PPARа发挥抗炎作用第38-40页
        4.4.3 激活 PPARа能够抑制 TLR4/ NF-κB 信号通路第40-41页
        4.4.4 LPS 抑制 PPARа活性第41-43页
    4.5 本章小结第43-44页
第五章 研究结果及展望第44-45页
    5.1 本文的主要研究结果及讨论第44页
    5.2 后续研究展望第44-45页
参考文献第45-48页
致谢第48-49页
作者及指导教师简介第49页

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