| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 附图目录 | 第11-12页 |
| 附表目录 | 第12-13页 |
| 英文缩写对照表 | 第13-14页 |
| 1. 引言 | 第14-17页 |
| 2. 新生大鼠海马NSCs的培养及鉴定 | 第17-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第17页 |
| 2.1.2 主要实验仪器及试剂 | 第17页 |
| 2.1.3 主要培养基配制 | 第17-18页 |
| 2.2 NSCs的原代与传代培养 | 第18-19页 |
| 2.2.1 NSCs的原代培养 | 第18-19页 |
| 2.2.2 NSCs的传代培养 | 第19页 |
| 2.3 NSCs的免疫组化鉴定 | 第19-20页 |
| 2.3.1 NSCs接种与固定 | 第19页 |
| 2.3.2 NSCs免疫组化染色 | 第19-20页 |
| 2.4 NSCs培养与鉴定结果 | 第20-22页 |
| 2.4.1 NSCs培养结果 | 第20-21页 |
| 2.4.2 NSCs免疫组化染色结果 | 第21-22页 |
| 2.5 讨论 | 第22-23页 |
| 2.6 小结 | 第23-24页 |
| 3. VEGF-165诱导分化NSCs | 第24-38页 |
| 3.1 实验材料 | 第24-25页 |
| 3.1.1 主要实验仪器 | 第24页 |
| 3.1.2 主要实验试剂 | 第24页 |
| 3.1.3 主要培养基配制 | 第24-25页 |
| 3.2 NSCs诱导分化 | 第25-28页 |
| 3.2.1 NSCs诱导分化培养 | 第25页 |
| 3.2.2 NSCs诱导分化后免疫荧光染色 | 第25-28页 |
| 3.3 诱导分化结果 | 第28-35页 |
| 3.3.1 NSCs诱导分化后形态学改变 | 第28-29页 |
| 3.3.2 NSCs诱导分化后免疫荧光染色结果 | 第29-35页 |
| 3.4 讨论 | 第35-36页 |
| 3.5 小结 | 第36-38页 |
| 4. 诱导分化后NSCs在Matrigel基底膜基质中的生长 | 第38-56页 |
| 4.1 实验材料 | 第38-39页 |
| 4.1.1 主要实验仪器 | 第38页 |
| 4.1.2 主要实验试剂 | 第38页 |
| 4.1.3 主要培养基配制 | 第38-39页 |
| 4.2 Matrigel基底膜基质三维立体培养 | 第39-41页 |
| 4.2.1 Matrigel基底膜基质三维立体培养及分组 | 第39-40页 |
| 4.2.2 Matrigel基底膜基质的分装与包被 | 第40页 |
| 4.2.3 Matrigel基底膜基质中神经干细胞的接种与培养 | 第40-41页 |
| 4.3 神经干细胞三维立体培养后免疫荧光染色 | 第41-43页 |
| 4.3.1 免疫荧光染色前准备 | 第41页 |
| 4.3.2 免疫荧光染色步骤 | 第41-43页 |
| 4.4 神经干细胞在Matrigel基底膜基质中生长分化结果 | 第43-53页 |
| 4.4.1 神经干细胞在Matrigel基底膜基质三维立体培养结果 | 第43-45页 |
| 4.4.2 巢蛋白Nestin免疫荧光染色结果 | 第45-46页 |
| 4.4.3 β-tubulinⅢ蛋白和GFAP蛋白免疫荧光双重染色结果 | 第46-53页 |
| 4.5 讨论 | 第53-55页 |
| 4.6 小结 | 第55-56页 |
| 5. 结论 | 第56-57页 |
| 6. 参考文献 | 第57-60页 |
| 综述 神经干细胞对组织修复的新进展 | 第60-73页 |
| 摘要 | 第60页 |
| Abstract | 第60-61页 |
| 引言 | 第61页 |
| 1. 移植的神经干细胞的营养作用 | 第61-64页 |
| 1.1 移植用于实验性神经系统疾病的研究 | 第62-63页 |
| 1.2 中枢神经系统损伤中移植神经干细胞的神经营养因子传递 | 第63-64页 |
| 2. 调节免疫反应 | 第64-66页 |
| 3. 细胞间的相互作用和非典型异位干细胞微环境的形成 | 第66-68页 |
| 结论 | 第68页 |
| 参考文献 | 第68-73页 |
| 自我介绍 | 第73-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
