| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3页 |
| 引言 | 第6-8页 |
| 第一章 实验材料与方法 | 第8-14页 |
| 1.1 实验动物 | 第8页 |
| 1.2 主要实验仪器和实验试剂、药物 | 第8-9页 |
| 1.2.1 主要实验仪器和器械 | 第8页 |
| 1.2.2 主要实验试剂和药物 | 第8-9页 |
| 1.3 主要实验试剂的配制 | 第9页 |
| 1.4 实验模型的建立与分组 | 第9页 |
| 1.4.1 实验分组 | 第9页 |
| 1.4.2 模型的建立 | 第9页 |
| 1.4.3 大鼠经口灌胃给药 | 第9页 |
| 1.5 实验方法 | 第9-13页 |
| 1.5.1 常规石蜡包埋 | 第9-10页 |
| 1.5.2 免疫组织化学检测转录因子NF-E2相关因子(Nrf-2)在视网膜的表达 | 第10-11页 |
| 1.5.3 免疫组织化学检测过氧化氢酶(CAT)在视网膜的表达 | 第11页 |
| 1.5.4 TUNEL染色观察视网膜神经细胞凋亡 | 第11-12页 |
| 1.5.5 视网膜电镜标本制备方法 | 第12-13页 |
| 1.6 结果分析方法 | 第13页 |
| 1.7 统计学处理方法 | 第13-14页 |
| 第二章 实验结果 | 第14-16页 |
| 2.1 血糖测定结果 | 第14页 |
| 2.2 免疫组织化学检测转录因子NF-E2相关因子(Nrf-2)在视网膜的表达 | 第14页 |
| 2.3 免疫组织化学检测过氧化氢酶(CAT)在视网膜的表达 | 第14-15页 |
| 2.4 视网膜神经细胞凋亡数目 | 第15页 |
| 2.5 视网膜神经节细胞电镜检查结果 | 第15-16页 |
| 第三章 讨论 | 第16-21页 |
| 3.1 1型糖尿病视网膜病变模型的建立及鉴定 | 第16页 |
| 3.2 氧化应激与糖尿病视网膜病变 | 第16-17页 |
| 3.3 Nrf2/ARE通路与抗氧化应激 | 第17-18页 |
| 3.4 糖尿病视网膜病变中的神经节细胞凋亡 | 第18页 |
| 3.5 左卡尼汀对糖尿病视网膜病变的保护作用 | 第18-21页 |
| 结论 | 第21-22页 |
| 参考文献 | 第22-26页 |
| 综述 | 第26-37页 |
| 参考文献 | 第32-37页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第37-38页 |
| 附录 | 第38-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
