| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 专业名词缩写中英文对照表 | 第13-14页 |
| 1. 前言 | 第14-17页 |
| 2. 材料与方法 | 第17-30页 |
| 2.1 试剂与仪器 | 第17-19页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第17-18页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第19页 |
| 2.2 方法 | 第19-29页 |
| 2.2.1 动物造模及分组 | 第19-20页 |
| 2.2.2 神经学功能评分及TTC染色 | 第20-21页 |
| 2.2.3 组织学检测 | 第21-23页 |
| 2.2.4 组织Caspase-3活性检测 | 第23页 |
| 2.2.5 脑组织NADPH氧化酶活性检测 | 第23-24页 |
| 2.2.6 脑组织中H_2O_2含量的测定 | 第24页 |
| 2.2.7 脑组织MLCK活性测定 | 第24页 |
| 2.2.8 RNA的提取 | 第24-25页 |
| 2.2.9 RNA逆转录 | 第25页 |
| 2.2.10 Real-time PCR | 第25-26页 |
| 2.2.11 脑组织蛋白的提取 | 第26-27页 |
| 2.2.12 蛋白表达检测 | 第27-29页 |
| 2.3 统计学分析 | 第29-30页 |
| 3. 结果 | 第30-42页 |
| 3.1 大鼠神经学功能评分和死亡率 | 第30页 |
| 3.2 大鼠脑梗死体积 | 第30页 |
| 3.3 脑组织病理变化 | 第30-31页 |
| 3.4 脑组织caspase 3活性及脑组织TUNEL染色 | 第31页 |
| 3.5 脑组织中NADPH氧化酶活性及H_2O_2含量 | 第31页 |
| 3.6 脑组织NOX的mRNA和蛋白表达 | 第31页 |
| 3.7 脑组织MLCK活性 | 第31-32页 |
| 3.8 脑组织MLC_(20)蛋白磷酸化水平 | 第32-33页 |
| 附图 | 第33-42页 |
| 4. 讨论 | 第42-45页 |
| 5. 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-49页 |
| 综述 | 第49-57页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 攻读硕士学位期间主要研究成果 | 第57-59页 |
| 致谢 | 第59页 |