| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 英文缩写词表 | 第15-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-39页 |
| 1.1 巨噬细胞 | 第17-22页 |
| 1.1.1 巨噬细胞的分类 | 第18-19页 |
| 1.1.2 经典活化的巨噬细胞（M1） | 第19-20页 |
| 1.1.3 替代性活化的巨噬细胞（M2） | 第20-21页 |
| 1.1.4 肿瘤相关巨噬细胞（TAMs） | 第21-22页 |
| 1.2 巨噬细胞极化的调控 | 第22-33页 |
| 1.2.1 STATs家族 | 第22-24页 |
| 1.2.2 过氧化物酶增殖激活受体-γ (PPARγ) | 第24-25页 |
| 1.2.3 缺氧诱导因子（HIF） | 第25-26页 |
| 1.2.4 干扰素调控因子（IRF） | 第26-27页 |
| 1.2.5 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子（GM-CSF） | 第27-28页 |
| 1.2.6 NF-κB | 第28-30页 |
| 1.2.7 Micro RNAs | 第30-33页 |
| 1.3 肿瘤相关巨噬细胞（TAMs）与肿瘤的治疗 | 第33-37页 |
| 1.3.1 TAMs与血管生成 | 第33-34页 |
| 1.3.2 TAMs与转移 | 第34-35页 |
| 1.3.3 TAMs与免疫抑制 | 第35-36页 |
| 1.3.4 TAMs的靶向治疗 | 第36-37页 |
| 1.4 Endostatin 基因的功能 | 第37-39页 |
| 第二章 材料与方法 | 第39-51页 |
| 2.1 实验材料 | 第39-41页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第39-40页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第40-41页 |
| 2.1.3 细胞株和实验动物 | 第41页 |
| 2.1.4 载体、质粒及菌株 | 第41页 |
| 2.2 实验方法 | 第41-50页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第41-42页 |
| 2.2.2 肿瘤细胞与巨噬细胞共培养体系 | 第42页 |
| 2.2.3 骨髓巨噬细胞（BMDMs）的提取和鉴定 | 第42-43页 |
| 2.2.4 HE染色检测细胞形态 | 第43页 |
| 2.2.5 MTT法检测细胞增殖 | 第43页 |
| 2.2.6 划痕实验检测巨噬细胞对肿瘤细胞迁移能力的影响 | 第43-44页 |
| 2.2.7 流式细胞术检测细胞周期 | 第44页 |
| 2.2.8 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第44页 |
| 2.2.9 流式细胞术检测巨噬细胞极性 | 第44-45页 |
| 2.2.10 Western Blot检测相关蛋白表达 | 第45-46页 |
| 2.2.11 RT-PCR和q RT-PCR检测m RNA的表达 | 第46-48页 |
| 2.2.12 ELISA检测Endostatin和IL-12p40的水平 | 第48-49页 |
| 2.2.13 双荧光素酶报告基因分析 | 第49页 |
| 2.2.14 免疫组化检测肿瘤组织中蛋白的表达情况 | 第49-50页 |
| 2.2.15 扫描电镜观察肿瘤组织中血管形态的变化 | 第50页 |
| 2.3 统计分析 | 第50-51页 |
| 第三章 实验结果 | 第51-83页 |
| 3.1 Endostatin对巨噬细胞极化影响的体外研究 | 第51-60页 |
| 3.2 p Endostatin诱导的M1型巨噬细胞对 4T1细胞和B16细胞作用的体外研究 | 第60-71页 |
| 3.3 减毒沙门氏菌携带p Endostatin对肿瘤相关巨噬细胞（TAM）极化影响的体内研究 | 第71-83页 |
| 第四章 讨论 | 第83-93页 |
| 4.1 Endostatin对巨噬细胞极化方向的影响及其机制探讨 | 第85-87页 |
| 4.2 Endostatin诱导的M1型巨噬细胞对小鼠乳腺癌 4T1细胞和黑色素瘤B16细胞的影响及其机制探讨 | 第87-90页 |
| 4.3 在体内实验中，Endostatin对肿瘤相关巨噬细胞（TAMs）极化的影响及其机制探讨 | 第90-93页 |
| 第五章 结论 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-115页 |
| 在读期间所取得的科研成果 | 第115-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
