致谢 | 第7-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-11页 |
第一章 绪论 | 第16-30页 |
1.1 枳椇多糖的国内外研究进展 | 第16-18页 |
1.1.1 枳椇多糖的提取优化 | 第16-17页 |
1.1.2 枳椇多糖的结构表征 | 第17页 |
1.1.3 枳椇多糖的生物活性 | 第17-18页 |
1.2 多糖的国内外研究进展 | 第18-27页 |
1.2.1 多糖提取纯化的研究进展 | 第18-20页 |
1.2.2 多糖结构解析的研究进展 | 第20-26页 |
1.2.3 多糖生物活性的研究进展 | 第26-27页 |
1.3 本课题研究的内容与意义 | 第27-28页 |
1.4 研究技术线路图 | 第28-30页 |
第二章 材料与方法 | 第30-39页 |
2.1 实验材料 | 第30页 |
2.2 实验试剂 | 第30-31页 |
2.3 实验仪器 | 第31页 |
2.4 实验方法 | 第31-38页 |
2.4.1 原料预处理 | 第31-32页 |
2.4.2 枳椇多糖的提取条件优化 | 第32-33页 |
2.4.3 枳椇粗多糖的醇沉分级 | 第33-34页 |
2.4.4 枳椇粗多糖HDPs的分离纯化 | 第34页 |
2.4.5 枳椇多糖抗氧化活性的研究 | 第34页 |
2.4.6 枳椇多糖的理化特性分析 | 第34-35页 |
2.4.7 枳椇多糖的光谱分析 | 第35页 |
2.4.8 枳椇多糖均一组分HDP3A的结构解析 | 第35-37页 |
2.4.9 枳椇多糖不同组分的免疫调节活性研究 | 第37-38页 |
2.5 实验数据的处理 | 第38-39页 |
第三章 结果与分析 | 第39-59页 |
3.1 枳椇多糖的提取条件优化 | 第39-44页 |
3.1.1 枳椇多糖的提取条件的单因素实验结果 | 第39-40页 |
3.1.1.1 提取温度对枳椇多糖提取率的影响 | 第39页 |
3.1.1.2 超声功率对多糖提取率的影响 | 第39-40页 |
3.1.1.3 提取时间对多糖提取率的影响 | 第40页 |
3.1.2 BBD响应面优化实验的结果 | 第40-44页 |
3.2 醇沉分级获得的不同级分多糖的结构表征和体外抗氧化活性的研究 | 第44-48页 |
3.2.1 醇沉不同级分多糖的理化性质实验结果 | 第44-45页 |
3.2.2 醇沉不同级分多糖的红外光谱分析 | 第45页 |
3.2.3 醇沉不同级分多糖的单糖组成分析 | 第45-46页 |
3.2.4 醇沉不同级分多糖的体外抗氧化活性实验的结果 | 第46-48页 |
3.3 枳椇多糖均一组分HDP3A的获得 | 第48-49页 |
3.3.1 枳椇粗多糖的分离纯化 | 第48页 |
3.3.2 枳椇多糖均一组分HDP3A的验证 | 第48-49页 |
3.4 枳椇多糖均一组分HDP3A的结构解析 | 第49-56页 |
3.4.1 枳椇多糖HDP3A的理化性质分析 | 第49页 |
3.4.2 枳椇多糖HDP3A的红外光谱分析 | 第49-50页 |
3.4.3 枳椇多糖HDP3A的紫外光谱分析 | 第50页 |
3.4.4 枳椇多糖HDP3A中糖醛酸的还原 | 第50-51页 |
3.4.5 枳椇多糖HDP3A和HDP3A-R组分的单糖组成分析 | 第51-52页 |
3.4.6 HDP3A的部分酸水解 | 第52-53页 |
3.4.7 GC-MS的实验结果 | 第53-54页 |
3.4.8 核磁共振波谱的实验结果与分析 | 第54-56页 |
3.5 枳椇多糖的体外免疫活性研究 | 第56-59页 |
3.5.1 细胞增殖活性的分析 | 第56-57页 |
3.5.2 中性红吞噬活性 | 第57-58页 |
3.5.3 NO产生量的测定分析 | 第58-59页 |
第四章 结论 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-68页 |
攻读硕士学位期间的学术活动及成果情况 | 第68页 |