| 中文摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英汉缩略词对照表 | 第8-9页 |
| 前言 | 第9-12页 |
| 1 材料与方法 | 第12-19页 |
| 1.1 实验材料与仪器 | 第12-13页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第13-14页 |
| 1.3 重要试剂的配制 | 第14-15页 |
| 1.4 实验方法 | 第15-19页 |
| 1.4.1 实验动物及分组 | 第15页 |
| 1.4.2 大鼠全脑I/R损伤模型的建立 | 第15页 |
| 1.4.3 高浓度氢气制备 | 第15-16页 |
| 1.4.4 尼氏染色观察大鼠海马CA1区神经元形态及数量 | 第16页 |
| 1.4.5 免疫组织化学法行神经元特异性核蛋白抗体（NeuN）及小胶质细胞特异性蛋白抗体（Iba1）染色 | 第16-17页 |
| 1.4.6 免疫荧光双标染色观察神经元与小胶质细胞的位置关系 | 第17页 |
| 1.4.7 Morris水迷宫实验检测大鼠的学习记忆以及空间定位能力 | 第17-18页 |
| 1.4.8 高尔基染色检测神经元树突棘的数量 | 第18页 |
| 1.4.9 统计学分析 | 第18-19页 |
| 2 结果 | 第19-27页 |
| 2.1 模型结果 | 第19页 |
| 2.2 尼氏染色及免疫组化NeuN染色结果 | 第19-21页 |
| 2.3 细胞免疫组化Iba1染色结果以及免疫荧光双标NeuN与Iba1观察神经元与小胶质细胞的位置关系结果 | 第21-23页 |
| 2.4 Morris水迷宫实验 | 第23-24页 |
| 2.5 高尔基染色结果 | 第24-26页 |
| 2.6 统计分析结果 | 第26-27页 |
| 3 讨论 | 第27-30页 |
| 3.1 模型的建立 | 第27页 |
| 3.2 氢气对大鼠全脑I/R后海马CA1区神经元的保护作用 | 第27-28页 |
| 3.3 氢气对大鼠全脑I/R后小胶质细胞的作用 | 第28-29页 |
| 3.4 氢气对大鼠全脑I/R后神经元树突棘及空间学习记忆能力的影响 | 第29-30页 |
| 3.5 本实验的研究展望 | 第30页 |
| 4 结论 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-34页 |
| 综述 | 第34-42页 |
| 参考文献 | 第39-42页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43页 |
