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NMNAT1突变致病机理的研究及NMNAT1-LCA9小鼠模型的构建与基因治疗

致谢第5-7页
摘要第7-9页
ABSTRACT第9-11页
英语缩略词第12-17页
第一章 引言第17-23页
    1.1 Leber式先天性黑蒙症第17页
    1.2 LCA9致病基因——NMNAT1的研究进展第17-22页
    1.3 总结第22-23页
第二章 NMNAT1突变对蛋白功的能影响第23-64页
    2.1 实验目的第23页
    2.2 实验材料第23-26页
        2.2.1 主要仪器第23-24页
        2.2.2 主要试剂第24-26页
        2.2.3 常用试剂的配制第26页
    2.3 实验方法第26-50页
        2.3.1 pEGFP-NMNAT1野生型及突变型质粒的构建第26-35页
        2.3.2 pET30a-NMNAT1野生型及突变型质粒的构建第35-36页
        2.3.3 pCMV-NMNAT1野生型及突变型质粒的构建第36-37页
        2.3.4 HeLa细胞的复苏、传代及冻存第37-38页
        2.3.5 HeLa细胞的转皿及转染第38-39页
        2.3.6 HeLa细胞免疫荧光的制备及观察第39-40页
        2.3.7 NMNAT1体内酶活力的检测第40-44页
        2.3.8 NMNAT1体外酶活力的检测第44-46页
        2.3.9 圆二色谱检测蛋白二级结构第46-48页
        2.3.10 生物信息学分析突变对NMNAT1三级结构及化学键键的影响第48-50页
    2.4 实验结果第50-60页
        2.4.1 重组质粒测序验证第50页
        2.4.2 pEGFP-NMNAT1野生型及突变型的细胞定位第50-51页
        2.4.3 NMNAT1蛋白野生型及突变型细胞内酶活性的检测第51-53页
        2.4.4 NMNAT1蛋白野生型及突变型体外酶活性的检测第53-54页
        2.4.5 错义突变对NMNAT1蛋白二级结构及热稳定性的影响第54-57页
        2.4.6 生物信息分析突变对蛋白三级结构的影响第57页
        2.4.7 生物信息分析突变对蛋白内部化学键的影响第57-60页
    2.5 讨论和总结第60-64页
第三章 NMNAT1-LCA小鼠模型的构建及基因治疗第64-95页
    3.1 实验目的第64页
    3.2 实验材料第64-66页
        3.2.1 主要仪器第64-65页
        3.2.2 主要试剂第65页
        3.2.3 常用实验试剂配制第65页
        3.2.4 实验动物第65-66页
    3.3 实验方法第66-78页
        3.3.1 突变位点分析第66页
        3.3.2 guideRNA(gRNA)的设计、体外转录及纯化第66-69页
        3.3.3 Cas9 mRNA的获取第69-70页
        3.3.4 单链修复模板的设计与合成第70页
        3.3.5 出生小鼠基因型鉴定第70-72页
        3.3.6 NMNAT1-LCA9小鼠模型ERG检测第72-73页
        3.3.7 NMNAT1-LCA9小鼠模型OCT检测及眼底成像第73-74页
        3.3.8 NMNAT1-LCA9小鼠视网膜组织切片的制备第74-75页
        3.3.9 NMNAT1-LCA9型小鼠基因治疗第75-78页
    3.4 实验结果第78-91页
        3.4.1 NMNAT1-LCA9小鼠基因型鉴定第78-79页
        3.4.2 野生型,杂合子及NMNAT1-LCA9小鼠模型ERG检测第79-83页
        3.4.3 野生型,杂合子及NMNAT1-LCA9小鼠模型眼底及OCT检测第83-85页
        3.4.4 野生型、杂合子突变及NMNAT1-LCA9小鼠模型组织切片检测第85-87页
        3.4.5 NMNAT1-LCA9小鼠基因治疗后视网膜形态及光感受器功能检测第87-91页
    3.5 结果与讨论第91-95页
参考文献第95-100页
文献综述第100-129页
    1.1 LCA研究背景及临床表型第100-102页
    1.2 LCA的分子遗传学第102-108页
    1.3 LCA基因治疗的研究进展第108-117页
    参考文献第117-129页

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