| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 略语表 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第11-33页 |
| 1.1 玉米花序发育决定籽粒产量潜能 | 第11-12页 |
| 1.2 玉米雄花序的建成 | 第12-14页 |
| 1.3 玉米雌花序的建成 | 第14-15页 |
| 1.4 玉米花序发育与叶龄间的关系 | 第15-16页 |
| 1.5 玉米花序建成的分子遗传调控研究进展 | 第16-24页 |
| 1.5.1 玉米花序的建成和维持 | 第17-18页 |
| 1.5.2 玉米雄花序分支分生组织的发育 | 第18-20页 |
| 1.5.3 玉米雌雄花序分化 | 第20页 |
| 1.5.4 玉米花序调控重要途径 | 第20-22页 |
| 1.5.5 激素参与花序发育调控 | 第22-24页 |
| 1.5.6 miRNAs参与花序发育调控 | 第24页 |
| 1.6 转录组测序技术 | 第24-29页 |
| 1.6.1 转录组测序技术原理 | 第24-25页 |
| 1.6.2 转录组测序技术研究进展 | 第25-28页 |
| 1.6.3 转录组技术在科研中应用 | 第28-29页 |
| 1.7 GRF-INTERACTING FACTOR与植物发育 | 第29-32页 |
| 1.7.1 GRF-INTERACTING FACTOR概述 | 第29-31页 |
| 1.7.2 GIRs功能研究进展 | 第31页 |
| 1.7.3 GIRs与其他因子的关系 | 第31-32页 |
| 1.8 研究目的与意义 | 第32-33页 |
| 2 材料与方法 | 第33-39页 |
| 2.1 研究材料 | 第33页 |
| 2.2.突变体的植物学表型观察 | 第33-34页 |
| 2.3 突变体雌雄花序细胞学观察 | 第34-35页 |
| 2.3.1 野生型和突变体雌雄花序取样 | 第34-35页 |
| 2.3.2 雌雄花序取样材料处理和成像 | 第35页 |
| 2.4 转录组分析 | 第35-38页 |
| 2.4.1 取样 | 第35页 |
| 2.4.2 RNA抽提和质量检测 | 第35页 |
| 2.4.3 转录组测序和结果分析 | 第35-38页 |
| 2.5 qPCR分析 | 第38-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-69页 |
| 3.1 突变体的植物学表型观察 | 第39-43页 |
| 3.2 突变体雌雄花序发育进程的细胞学观察 | 第43-54页 |
| 3.2.1 雌雄花序发育期比较 | 第43-45页 |
| 3.2.2 雄花序发育进程的扫描电子显微镜观察 | 第45-49页 |
| 3.2.3 雌花序发育进程的扫描电子显微镜观察 | 第49-54页 |
| 3.3 野生型和突变体雄花序原基的转录组分析 | 第54-63页 |
| 3.3.1 RNA质量检测 | 第54-55页 |
| 3.3.2 测序深度与序列质量分析 | 第55-57页 |
| 3.3.4 差异表达基因分析 | 第57-59页 |
| 3.3.5 差异表达基因GO富集分析 | 第59-61页 |
| 3.3.6 差异表达基因KEGG调控途径富集分析 | 第61-62页 |
| 3.3.7 差异表达基因Mapman功能富集分析 | 第62-63页 |
| 3.4 关键基因分析和qPCR验证 | 第63-69页 |
| 3.4.1 与lsd互作的基因分析 | 第63-64页 |
| 3.4.2 与细胞周期相关差异表达基因分析 | 第64-65页 |
| 3.4.3 与花序发育相关差异表达基因分析 | 第65-66页 |
| 3.4.4 与植物激素相关差异表达基因分析 | 第66-69页 |
| 4 讨论 | 第69-73页 |
| 4.1 lsd的生物学功能 | 第69-70页 |
| 4.2 lsd可能的调控途径分析 | 第70-72页 |
| 4.3 本研究的不足与后续工作 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-87页 |
| 附录 | 第87-94页 |
| 致谢 | 第94页 |