| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略词中英文注释表 | 第12-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-23页 |
| 1.1 间充质干细胞 | 第14-20页 |
| 1.1.1 间充质干细胞概述 | 第14-15页 |
| 1.1.2 MSCs的生物学特性 | 第15-17页 |
| 1.1.3 人胚胎干细胞来源的间充质干细胞 | 第17-18页 |
| 1.1.4 MSCs与肿瘤的关系 | 第18-20页 |
| 1.2 细胞外微囊泡与肿瘤 | 第20-22页 |
| 1.2.1 微囊泡概述 | 第20页 |
| 1.2.2 肿瘤细胞分泌的MVs促进肿瘤的发展 | 第20-21页 |
| 1.2.3 MSCs分泌的MVs抑制肿瘤的发展 | 第21-22页 |
| 1.3 小结 | 第22-23页 |
| 第二章 研究目的意义、方法、内容 | 第23-25页 |
| 2.1 研究目的及意义 | 第23页 |
| 2.2 研究方法 | 第23页 |
| 2.3 研究内容 | 第23-25页 |
| 2.3.1 hESC-MSC-MVs体外对K562和HL60增殖的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.2 hESC-MSC-MVs抑制K562和HL60机制的研究 | 第24-25页 |
| 第三章 hESC-MSC-MVs体外对K562和HL60增殖的影响 | 第25-42页 |
| 3.1 材料 | 第25-29页 |
| 3.1.1 细胞来源 | 第25页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第25-26页 |
| 3.1.3 试剂 | 第26-27页 |
| 3.1.4 试剂配制 | 第27-29页 |
| 3.2 方法 | 第29-34页 |
| 3.2.1 MEF饲养层的制备 | 第29页 |
| 3.2.2 丝裂霉素C处理MEF | 第29-30页 |
| 3.2.3 hESCs接种至处理后的饲养层 | 第30页 |
| 3.2.4 hESCs自发分化为hESC-MSCs | 第30页 |
| 3.2.5 细胞的冻存和复苏 | 第30-31页 |
| 3.2.6 hESC-MSCs条件培养基的制备 | 第31页 |
| 3.2.7 hESC-MSC-MVs的提取与浓度测定 | 第31页 |
| 3.2.8 透射电镜的样品制备 | 第31-32页 |
| 3.2.9 扫描电镜的样品制备 | 第32页 |
| 3.2.10 hESC-MSCs体外对K562和HL60增殖的影响 | 第32-33页 |
| 3.2.11 hESC-MSC-MVs体外对K562和HL60增殖的影响 | 第33-34页 |
| 3.3 统计分析 | 第34页 |
| 3.4 结果 | 第34-39页 |
| 3.4.1 hESCs及自发分化为hESC-MSCs的细胞形态 | 第34-35页 |
| 3.4.2 hESC-MSCs与传统骨髓、脐带来源MSCs的形态比较 | 第35页 |
| 3.4.3 hESC-MSC-MVs分泌过程及形态特征 | 第35-36页 |
| 3.4.4 hESC-MSCs对K562和HL60增殖的影响 | 第36-38页 |
| 3.4.5 hESC-MSC-MVs对K562和HL60增殖的影响 | 第38-39页 |
| 3.5 讨论 | 第39-42页 |
| 第四章 hESC-MSC-MVs抑制K562和HL60机制的研究 | 第42-55页 |
| 4.1 材料 | 第43-46页 |
| 4.1.1 细胞来源 | 第43页 |
| 4.1.2 仪器 | 第43页 |
| 4.1.3 试剂 | 第43页 |
| 4.1.4 抗体 | 第43-44页 |
| 4.1.5 Western blot试剂配制 | 第44-46页 |
| 4.2 方法 | 第46-48页 |
| 4.2.1 透射电镜的样品制备 | 第46页 |
| 4.2.2 Western blot蛋白电泳 | 第46-48页 |
| 4.2.3 流式细胞分析 | 第48页 |
| 4.3 统计分析 | 第48页 |
| 4.4 结果 | 第48-52页 |
| 4.4.1 hESC-MSC-MVs对K562和HL60自噬的调节作用 | 第48-50页 |
| 4.4.2 hESC-MSC-MVs对K562和HL60凋亡的调节作用 | 第50-52页 |
| 4.5 讨论 | 第52-55页 |
| 实验结论及展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 攻读硕士期间发表文章 | 第66页 |
