| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 中英文对照缩略语表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1 油菜素内酯 | 第11-16页 |
| 1.1 BR的生物合成 | 第11-13页 |
| 1.2 BR的信号转导 | 第13-15页 |
| 1.3 BR在植物体内的生理功能 | 第15-16页 |
| 2 活性氧 | 第16-21页 |
| 2.1 活性氧的种类 | 第16-17页 |
| 2.2 活性氧的产生 | 第17-18页 |
| 2.3 植物细胞中ROS的清除 | 第18-19页 |
| 2.4 ROS的细胞信号转导 | 第19-21页 |
| 3 本研究内容和目的 | 第21-23页 |
| 第二章 BR诱导的玉米ZmBSK1基因克隆,序列分析与亚细胞定位 | 第23-37页 |
| 1 材料与方法 | 第24-31页 |
| 1.1 供试材料 | 第24-25页 |
| 1.2 ZmBSK1基因克隆 | 第25-28页 |
| 1.3 瞬时表达载体的构建 | 第28-29页 |
| 1.4 玉米原生质体的分离 | 第29-30页 |
| 1.5 基因枪法转化 | 第30-31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-34页 |
| 2.1 RNA质量检测 | 第31页 |
| 2.2 ZmBSK1基因的TA克隆 | 第31-32页 |
| 2.3 玉米中BSK1的亚细胞定位 | 第32-34页 |
| 3 讨论 | 第34-37页 |
| 第三章 ZmBSK1参与BR诱导的抗氧化防护 | 第37-47页 |
| 1 材料与方法 | 第38-42页 |
| 1.1 供试材料 | 第38-39页 |
| 1.2 目标基因引物设计 | 第39-40页 |
| 1.3 质粒的提取 | 第40页 |
| 1.4 dsRNA体外合成 | 第40-41页 |
| 1.5 40% PEG介导转化 | 第41-42页 |
| 1.6 荧光定量PCR | 第42页 |
| 1.7 用转化后的玉米原生质体,提取粗酶液测活性 | 第42页 |
| 2 结果与分析 | 第42-45页 |
| 2.1 BR诱导下ZmBSK1基因表达的时间进程分析 | 第42-43页 |
| 2.2 ZmBSK1瞬时表达及瞬时沉默对BR诱导的抗氧化防护酶活性的影响 | 第43-45页 |
| 3 讨论 | 第45-47页 |
| 第四章 ZmBSK1基因对于玉米原生质体中活性氧ROS积累的影响 | 第47-59页 |
| 1 材料与方法 | 第49-51页 |
| 1.1 供试材料 | 第49-50页 |
| 1.2 引物设计 | 第50页 |
| 1.3 质粒的提取 | 第50页 |
| 1.4 dsRNA体外合成 | 第50页 |
| 1.5 40% PEG介导转化 | 第50页 |
| 1.6 荧光定量PCR | 第50页 |
| 1.7 玉米原生质体中H_2O_2的染色 | 第50-51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-56页 |
| 2.1 H_2O_2诱导下玉米ZmBSK1基因表达的时间进程分析 | 第51页 |
| 2.2 BR诱导下ZmBSK1基因对于原生质体中H_2O_2积累的影响 | 第51-53页 |
| 2.3 ZmBSK1基因对于RBOH基因家族的影响 | 第53-56页 |
| 3 讨论 | 第56-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 全文结论 | 第65-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
