| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 英文缩略词表 | 第12-14页 |
| 前言 | 第14-18页 |
| 第一部分 鱼腥草素钠对白假丝酵母菌生物被膜细胞凋亡的诱导作用研究 | 第18-32页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第18-20页 |
| 1.1 菌株和抗真菌药物 | 第18页 |
| 1.2 使用的主要试剂 | 第18页 |
| 1.3 主要溶液的配制 | 第18-19页 |
| 1.4 使用的主要仪器设备 | 第19-20页 |
| 2 实验方法 | 第20-23页 |
| 2.1 白假丝酵母菌悬液的制备 | 第20页 |
| 2.2 白假丝酵母菌生物被膜的构建 | 第20页 |
| 2.3 鱼腥草素钠对标准和临床白假丝酵母菌最小抑菌浓度的测定 | 第20-21页 |
| 2.4 白假丝酵母菌生物被膜细胞的获取 | 第21页 |
| 2.5 凋亡的药物诱导及脱壁处理 | 第21页 |
| 2.6 DAPI染色 | 第21-22页 |
| 2.7 Caspase酶活性的测定 | 第22页 |
| 2.8 线粒体膜电位(MMP)的变化 | 第22页 |
| 2.9 活性氧(ROS)水平的检测 | 第22页 |
| 2.10 用流式细胞仪检测凋亡率 | 第22-23页 |
| 2.11 统计学分析 | 第23页 |
| 3 实验结果 | 第23-30页 |
| 3.1 鱼腥草素钠和氟康唑对菌的MIC结果 | 第23-24页 |
| 3.2 鱼腥草素钠能够诱导临床耐药白假丝酵母菌生物被膜细胞核碎裂 | 第24-25页 |
| 3.3 鱼腥草素钠能够激活临床耐药白假丝酵母菌生物被膜细胞metacaspase活性 | 第25-26页 |
| 3.4 鱼腥草素钠可显著提高临床耐药白假丝酵母菌生物被膜细胞内活性氧水平 | 第26页 |
| 3.5 鱼腥草素钠可显著降低白色念珠菌生物被膜细胞线粒体膜电位 | 第26-27页 |
| 3.6 鱼腥草素钠对临床耐药白假丝酵母菌385生物被膜细胞凋亡率的影响 | 第27-30页 |
| 4 讨论 | 第30-31页 |
| 5 小结 | 第31-32页 |
| 第二部分 鱼腥草素钠与氟康唑联用对白假丝酵母菌生物被膜的作用及机制研究 | 第32-45页 |
| 1 实验材料和仪器 | 第32-34页 |
| 1.1 菌株和抗真菌药物 | 第32页 |
| 1.2 使用的主要试剂 | 第32页 |
| 1.3 主要溶液的配制 | 第32-33页 |
| 1.4 使用的主要仪器设备 | 第33-34页 |
| 2 实验方法 | 第34-38页 |
| 2.1 白假丝酵母菌悬液的配制与体外生物被膜的构建 | 第34页 |
| 2.2 药敏试验 | 第34-35页 |
| 2.3 PCR对白假丝酵母菌的检测 | 第35-37页 |
| 2.3.1 总RNA的提取及逆转录 | 第35-36页 |
| 2.3.2 引物的设计与合成 | 第36-37页 |
| 2.3.3 qRT-PCR反应 | 第37页 |
| 2.3.4 定量分析 | 第37页 |
| 2.4 SEM观察鱼腥草素钠和氟康唑的协同效果 | 第37-38页 |
| 2.5 统计学分析 | 第38页 |
| 3 实验结果 | 第38-42页 |
| 3.1 药敏试验结果 | 第38-40页 |
| 3.2 鱼腥草素钠协同氟康唑对Candida albicans 1601 相关基因表达的影响 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-44页 |
| 5 小结 | 第44-45页 |
| 全文总结 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 综述 | 第50-61页 |
| 参考文献 | 第58-61页 |
| 个人简介 | 第61-62页 |
| 攻读硕士研究生期间发表文章目录 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
