| 前言 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 英文缩写词对照表 | 第11-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-27页 |
| 1.1 顺铂 | 第13-22页 |
| 1.1.1 顺铂抗癌的作用机理 | 第13-14页 |
| 1.1.2 顺铂的排泄及肾脏损伤的病理生理学的改变 | 第14-15页 |
| 1.1.3 顺铂肾毒性相关分子机制 | 第15-20页 |
| 1.1.4 顺铂肾毒性的防治方法 | 第20-22页 |
| 1.2 芸香苷 | 第22-27页 |
| 1.2.1 芸香苷的药理活性 | 第23-27页 |
| 第2章 材料与方法 | 第27-39页 |
| 2.1 实验材料 | 第27-30页 |
| 2.1.1 药品及试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.2 抗体 | 第28页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.4 药物及主要试剂配制 | 第29-30页 |
| 2.1.5 HMC细胞株培养 | 第30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-38页 |
| 2.2.1 细胞复苏 | 第30页 |
| 2.2.2 细胞传代 | 第30页 |
| 2.2.3 细胞冻存 | 第30页 |
| 2.2.4 MTT法检测芸香苷对HMCs的保护作用 | 第30-31页 |
| 2.2.5 显微镜下观察HMCs生长状态 | 第31-32页 |
| 2.2.6 Hoechest 33258 染色法观察HMCs凋亡形态学的变化 | 第32页 |
| 2.2.7 PI法检测HMCs的细胞周期 | 第32-33页 |
| 2.2.8 Annexin V-PI双染法检测HMCs凋亡 | 第33页 |
| 2.2.9 原位装载DCFH-DA探针检测HMCs活性氧 | 第33-34页 |
| 2.2.10 应用相关试剂盒检测HMCs中SOD活力及MDA含量 | 第34-35页 |
| 2.2.11 Western blot法检测HMCs内相关蛋白表达 | 第35-38页 |
| 2.3 统计学分析 | 第38-39页 |
| 第3章 实验结果 | 第39-48页 |
| 3.1 芸香苷对HMCs细胞存活率的影响 | 第39页 |
| 3.2 芸香苷对HMCs细胞形态学的影响 | 第39-40页 |
| 3.3 芸香苷对HMCs细胞周期的影响 | 第40-41页 |
| 3.4 芸香苷对HMCs细胞凋亡的影响 | 第41-43页 |
| 3.5 芸香苷对HMCs细胞内ROS含量及SOD、MDA的影响 | 第43-44页 |
| 3.6 Western blot法检测HMCs内相关蛋白表达 | 第44-48页 |
| 3.6.1 芸香苷对顺铂诱导HMCs p53蛋白表达的影响 | 第44-45页 |
| 3.6.2 芸香苷对顺铂诱导HMCs caspase家族蛋白表达的影响 | 第45-47页 |
| 3.6.3 芸香苷对顺铂诱导HMCs Bcl-2 和Bax比率的影响 | 第47-48页 |
| 第4章 讨论 | 第48-56页 |
| 4.1 顺铂肾毒性的病理学改变及机制 | 第48-50页 |
| 4.2 选择HMCs作为顺铂肾毒性实验模型的可行性 | 第50-51页 |
| 4.3 芸香苷对HMCs的保护作用 | 第51-52页 |
| 4.4 芸香苷对氧化应激指标的影响 | 第52-54页 |
| 4.5 芸香苷对p53/caspase信号通路的影响 | 第54-56页 |
| 第5章 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-72页 |
| 作者简介 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73页 |
