| 缩略语表 | 第6-9页 |
| 中文摘要 | 第9-12页 |
| 英文摘要 | 第12-15页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 文献回顾 | 第18-35页 |
| 第一部分 丙型肝炎病毒NS3-5B转基因小鼠模型的制备 | 第35-54页 |
| 1 实验材料 | 第35-38页 |
| 1.1 质粒、菌种及实验动物 | 第35页 |
| 1.2 主要试剂 | 第35-36页 |
| 1.3 培养液（基）与缓冲液 | 第36-37页 |
| 1.4 主要仪器 | 第37-38页 |
| 2 实验方法 | 第38-46页 |
| 2.1 引物序列的设计与合成 | 第38-39页 |
| 2.2 制备NS3-5B转基因载体片段 | 第39页 |
| 2.3 NS3-5B转基因首建鼠制备 | 第39页 |
| 2.4 NS3-5B转基因首建鼠基因型鉴定 | 第39-40页 |
| 2.5 NS3-5B转基因小鼠建系与筛选 | 第40-41页 |
| 2.6 NS3-5B转基因小鼠基因表达检测 | 第41-45页 |
| 2.7 血清转氨酶检测 | 第45页 |
| 2.8 组织HE染色 | 第45-46页 |
| 2.9 统计学分析 | 第46页 |
| 3 实验结果 | 第46-51页 |
| 3.1 NS3-5B转基因载体片段的制备及纯化 | 第46-47页 |
| 3.2 NS3-5B转基因首建鼠基因型鉴定 | 第47页 |
| 3.3 NS3-5B转基因子代小鼠基因型鉴定 | 第47-49页 |
| 3.4 NS3-5B转基因小鼠基因表达检测 | 第49页 |
| 3.5 血清转氨酶检测结果 | 第49-50页 |
| 3.6 组织形态分析 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-54页 |
| 第二部分 丙型肝炎病毒微小基因组系统在体直观评价HCV RdRp酶的活性 | 第54-79页 |
| 1 实验材料 | 第54-57页 |
| 1.1 质粒、菌种及实验动物 | 第54-55页 |
| 1.2 主要试剂 | 第55-56页 |
| 1.3 培养液（基）与缓冲液 | 第56页 |
| 1.4 主要仪器 | 第56-57页 |
| 2 实验方法 | 第57-66页 |
| 2.1 引物序列的设计与合成 | 第57页 |
| 2.2 眼底静脉丛水动力基因转染技术 | 第57-58页 |
| 2.3 优化HCV微小基因组系统 | 第58-63页 |
| 2.4 血浆GLuc表达检测 | 第63页 |
| 2.5 血清转氨酶检测 | 第63页 |
| 2.6 组织HE染色 | 第63页 |
| 2.7 免疫组织化学染色 | 第63-64页 |
| 2.8 Western blot检测 | 第64-65页 |
| 2.9 单个组织器官活体成像 | 第65页 |
| 2.10 小动物活体成像 | 第65页 |
| 2.11 统计学分析 | 第65-66页 |
| 3 实验结果 | 第66-75页 |
| 3.1 重组质粒pcDNA3.1(+)-H0299G的构建 | 第66-67页 |
| 3.2 重组质粒pcDNA3.1(+)-H0299G的鉴定 | 第67-68页 |
| 3.3 利用HCV微小基因组系统评价HCV RdRp酶的活性 | 第68-71页 |
| 3.4 眼底静脉丛水动力转染技术在体组织特异性转染分析 | 第71-73页 |
| 3.5 眼底静脉丛水动力转染技术对小鼠肝脏组织损伤分析 | 第73-74页 |
| 3.6 HCV微小基因组系统在体直观的反映HCV RdRp酶的活性 | 第74-75页 |
| 4 讨论 | 第75-79页 |
| 小结 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-89页 |
| 个人简历和研究成果 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
