| 英文缩略词表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 前言 | 第13-14页 |
| 实验一 rBMSCs提取、培养及鉴定 | 第14-20页 |
| 1 实验对象与方法 | 第14-16页 |
| 1.1 实验对象 | 第14页 |
| 1.2 材料 | 第14-15页 |
| 1.3 方法 | 第15-16页 |
| 2 结果 | 第16-19页 |
| 2.1 rBMSCs原代培养及纯化细胞的形态学观察 | 第16-18页 |
| 2.2 rBMSCs成骨、成脂诱导后染色观察 | 第18页 |
| 2.3 流式细胞仪鉴定细胞表面标志物 | 第18-19页 |
| 3 讨论 | 第19-20页 |
| 实验二 不同浓度的TNF-α诱导rBMSCs炎症反应的效果比较 | 第20-27页 |
| 1 实验对象与方法 | 第20-22页 |
| 1.1 实验对象 | 第20页 |
| 1.2 材料 | 第20-21页 |
| 1.3 方法 | 第21-22页 |
| 1.4 统计学方法 | 第22页 |
| 2 结果 | 第22-25页 |
| 2.1 MTT法测得各组细胞生长曲线 | 第22-23页 |
| 2.2 ELISA试剂盒测得各组细胞TNF-α及IL-1β的分泌量 | 第23-25页 |
| 2.3 实时定量PCR测得各组细胞TNF-α及IL-1β基因表达水平 | 第25页 |
| 3 讨论 | 第25-27页 |
| 实验三 炎症微环境对rBMSCs成骨分化能力的影响 | 第27-34页 |
| 1 实验对象与方法 | 第27-30页 |
| 1.1 实验对象 | 第27页 |
| 1.2 材料 | 第27-28页 |
| 1.3 方法 | 第28-30页 |
| 1.4 统计学方法 | 第30页 |
| 2 结果 | 第30-32页 |
| 2.1 茜素红染色及钙离子沉积量的比较 | 第30-31页 |
| 2.2 实时定量PCR测得BSP、OCN及Runx2基因的表达水平 | 第31-32页 |
| 2.3 Western blot测得成骨蛋白ALP及Runx2的表达量及灰度值分析 | 第32页 |
| 3 讨论 | 第32-34页 |
| 实验四 DCEF对炎症微环境下的rBMSCs增殖及成骨分化的影响 | 第34-42页 |
| 1 实验对象与方法 | 第34-36页 |
| 1.1 实验对象 | 第34页 |
| 1.2 材料 | 第34页 |
| 1.3 方法 | 第34-36页 |
| 2 结果 | 第36-41页 |
| 2.1 MTT法测得各组细胞的生长曲线 | 第36-38页 |
| 2.2 茜素红染色及钙离子沉积量的比较 | 第38页 |
| 2.3 实时定量PCR测得BSP、OCN及Runx2基因的表达水平 | 第38-39页 |
| 2.4 Western blot测得成骨蛋白ALP及Runx2的表达量及灰度值分析 | 第39-41页 |
| 3 讨论 | 第41-42页 |
| 全文总结 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 文献综述 | 第48-56页 |
| 参考文献 | 第52-56页 |
| 攻读硕士期间发表文章和申请专利 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
