| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 中文对照表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-13页 |
| 第2章 材料与试剂 | 第13-18页 |
| 2.1 主要的材料与试剂 | 第13-14页 |
| 2.1.1 实验用的细胞株 | 第13页 |
| 2.1.2 主要的试剂和产品 | 第13-14页 |
| 2.2 实验主要仪器和设备 | 第14-15页 |
| 2.3 主要试剂配制 | 第15-18页 |
| 第3章 实验方法 | 第18-25页 |
| 3.1 人脐静脉内皮细胞HUVEC的培养 | 第18-19页 |
| 3.1.1 细胞复苏 | 第18页 |
| 3.1.2 细胞传代 | 第18-19页 |
| 3.2 实验分组及处理方法 | 第19-24页 |
| 3.2.1 实验分组与实验内容 | 第19页 |
| 3.2.2 CCK比色法检测细胞增殖 | 第19-20页 |
| 3.2.3 细胞凋亡试剂盒检测凋亡率 | 第20页 |
| 3.2.4 细胞周期试剂盒检测细胞周期 | 第20-21页 |
| 3.2.5 SA-β-Gal染色法检测细胞衰老 | 第21页 |
| 3.2.6 Fluo-3 AM钙离子荧光探针检测细胞内钙含量 | 第21-22页 |
| 3.2.7 ROS试剂盒检测细胞内ROS水平 | 第22页 |
| 3.2.8 Western blotting检测HUVEC细胞中P21、Sirt1及LC3II/LC3I蛋白表达水平 | 第22-24页 |
| 3.3 数据处理 | 第24-25页 |
| 第4章 实验结果 | 第25-40页 |
| 第一部分 RUT抗高糖诱导HUVEC细胞损伤 | 第25-35页 |
| 4.1 RUT抑制高糖诱导的HUVEC细胞活力下降 | 第25-26页 |
| 4.2 RUT可轻度抑制高糖诱导的HUVEC细胞凋亡 | 第26-27页 |
| 4.3 RUT对高糖诱导的HUVEC细胞自噬无明显影响 | 第27-28页 |
| 4.4 RUT抑制内皮细胞衰老 | 第28-31页 |
| 4.5 RUT抑制高糖诱导的HUVEC细胞周期G1/G0期阻滞 | 第31-32页 |
| 4.6 RUT可显著上调HUVEC细胞中长寿蛋白SIRT1的表达 | 第32-33页 |
| 4.7 RUT可显著降低高糖诱导的HUVEC细胞中ROS的生成 | 第33-35页 |
| 第二部分 TRPV1/胞内钙信号介导RUT的抗衰老机制 | 第35-40页 |
| 4.8 RUT可升高HUVEC细胞内钙浓度 | 第35-36页 |
| 4.9 TRPV1阻断剂CAPZ及胞内钙信号阻断剂（W-7和BAPTA）可减弱RUT的抗衰老作用 | 第36-40页 |
| 第5章 讨论 | 第40-43页 |
| 第6章 结论与展望 | 第43-44页 |
| 6.1 结论 | 第43页 |
| 6.2 展望 | 第43-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 综述 | 第48-58页 |
| 参考文献 | 第56-58页 |
