摘要 | 第10-12页 |
ABSTRACT | 第12-13页 |
缩略词(Abbreviation) | 第14-15页 |
第一章 绪论 | 第15-24页 |
1. 皮肤衰老概述 | 第15-18页 |
1.1. 衰老皮肤的变化 | 第15-16页 |
1.2. 延缓衰老化妆品中的活性成分 | 第16-18页 |
2. 胶原蛋白、基质金属蛋白酶及基质金属蛋白酶抑制剂的相互作用 | 第18-19页 |
2.1. 胶原蛋白 | 第18页 |
2.2. 基质金属蛋白酶 | 第18-19页 |
2.3. 基质金属蛋白酶抑制剂 | 第19页 |
3. 海参及其药理活性研究进展 | 第19-23页 |
3.1. 海参概述 | 第19-20页 |
3.2. 海参的营养成分研究 | 第20页 |
3.3. 海参多肽药理活性研究 | 第20-23页 |
4. 课题的研究目的及意义 | 第23-24页 |
第二章 刺参多肽的提取、分离、纯化及性质检测 | 第24-40页 |
1. 实验所用材料及试剂 | 第24-26页 |
1.1. 实验材料 | 第24页 |
1.2. 实验仪器和设备 | 第24-25页 |
1.3. 主要试剂及配制方 | 第25-26页 |
2. 实验方法 | 第26-30页 |
2.1. 刺参多肽的制备 | 第26-27页 |
2.2. DEAE阴离子交换层析及各组分活性筛选 | 第27-28页 |
2.3. G10凝胶层析脱盐 | 第28页 |
2.4. S200凝胶层析 | 第28-29页 |
2.5. SP12的超低分子量蛋白电泳分析 | 第29-30页 |
2.6. SP12的高效液相色谱分析 | 第30页 |
3. 实验结果 | 第30-37页 |
3.1. 刺参粗多肽的提取分离 | 第30-31页 |
3.2. 刺参多肽粗提物的细胞活性检测的结果 | 第31页 |
3.3. DEAE阴离子交换层析及各组分活性筛选 | 第31-34页 |
3.4. S200凝胶层析及各组分活性筛选 | 第34-36页 |
3.5. G10凝胶脱盐 | 第36页 |
3.6. SP12的超低分子量蛋白电泳分析结果 | 第36-37页 |
3.7. SP12多肽的高效液相色谱测定结果 | 第37页 |
4. 结果讨论 | 第37-38页 |
5. 本章小结 | 第38-40页 |
第三章 刺参多肽对NIH/3T3增殖、细胞周期及胶原蛋白分泌的作用 | 第40-49页 |
1. 实验所用材料及试剂 | 第40-42页 |
1.1. 实验材料 | 第40页 |
1.2. 实验仪器和设备 | 第40-41页 |
1.3. 主要试剂及配制方法 | 第41-42页 |
2. 实验方法 | 第42-45页 |
2.1. NIH/3T3细胞的传代、培养 | 第42页 |
2.2. 刺参多肽促进成纤维细胞增殖的检测 | 第42-43页 |
2.3. SP12对NIH/3T3细胞周期的影响 | 第43页 |
2.4. SP12对NIH/3T3细胞胶原蛋白表达的影响 | 第43-45页 |
3. 实验结果 | 第45-48页 |
3.1. SP12对NIH/3T3细胞增殖率的影响 | 第45页 |
3.2. SP12对NIH/3T3细胞周期的影响 | 第45-47页 |
3.3. SP12对NIH/3T3胶原蛋白表达的影响 | 第47-48页 |
4. 结果讨论 | 第48页 |
5. 本章小结 | 第48-49页 |
第四章 SP12对NIH/3T3细胞Ⅰ型胶原蛋白、MMP-1、TIMP-1表达的影响 | 第49-61页 |
1. 实验所用材料及试剂 | 第49-53页 |
1.1. 实验材料 | 第49页 |
1.2. 实验仪器和设备 | 第49-50页 |
1.3. 主要试剂及配制方法 | 第50-53页 |
2. 实验方法 | 第53-57页 |
2.1. Western Blot检测SP12作用后NIH/3T3细胞内Ⅰ型胶原蛋白、MMP-1、TIMP-1蛋白的表达变化 | 第53-54页 |
2.2. RT-PCR法检测SP12对NIH/3T3细胞中Ⅰ型胶原蛋白、MMP-1、TIMP-1在mRNA水平表达的影响 | 第54-57页 |
3. 实验结果 | 第57-59页 |
3.1. Western Blot检测结果 | 第57-58页 |
3.2. RT-PCR检测结果 | 第58-59页 |
4. 结果讨论 | 第59-60页 |
5. 本章小结 | 第60-61页 |
总结 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-67页 |
致谢 | 第67-68页 |
攻读学位期间发表的论文 | 第68-69页 |
附件 | 第69页 |