| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-6页 |
| 缩略词列表 | 第9-10页 |
| 1 绪论 | 第10-24页 |
| 1.1 课题的提出 | 第10-13页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第13-20页 |
| 1.2.1 植物miRNA的发现及研究方法 | 第13-18页 |
| 1.2.2 植物miRNA的生物合成途径及作用机制 | 第18-19页 |
| 1.2.3 植物miRNA的生理功能 | 第19-20页 |
| 1.3 研究目的与研究内容 | 第20-24页 |
| 1.3.1 研究目的 | 第20-21页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第21页 |
| 1.3.3 技术路线 | 第21-24页 |
| 2 番茄Sly-miR403功能获得/缺失载体的构建及表达分析 | 第24-46页 |
| 2.1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第24页 |
| 2.1.2 菌株与质粒 | 第24-25页 |
| 2.1.3 试剂与仪器 | 第25-26页 |
| 2.2 番茄miR403基因序列的生物信息学分析和预测 | 第26-36页 |
| 2.2.1 番茄Sly-miR403基因序列的预测及保守性分析 | 第26-28页 |
| 2.2.2 Sly-miR403超表达载体、Sly-miR403-sponge载体的设计及克隆 | 第28-33页 |
| 2.2.3 靶基因剪切位点的确定 | 第33-34页 |
| 2.2.4 Sly-miR403的表达模式 | 第34-35页 |
| 2.2.5 实时定量PCR分析靶基因的表达模式 | 第35-36页 |
| 2.3 结果与分析 | 第36-44页 |
| 2.3.1 Sly-miR403的前体植物表达载体的获得 | 第36-37页 |
| 2.3.2 Sly-miR403海绵载体的设计及克隆 | 第37-40页 |
| 2.3.3 Sly-miR403对靶基因的剪切鉴定 | 第40-42页 |
| 2.3.4 不同组织中Sly-miR403的表达分析 | 第42-44页 |
| 2.4 讨论 | 第44-45页 |
| 2.5 本章小结 | 第45-46页 |
| 3 Sly-miR403基因的遗传转化及功能分析 | 第46-66页 |
| 3.1 材料与方法 | 第46-52页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第46页 |
| 3.1.2 菌株和质粒 | 第46页 |
| 3.1.3 试剂和设备 | 第46页 |
| 3.1.4 主要溶液的配制 | 第46-49页 |
| 3.1.5 方法 | 第49-52页 |
| 3.2 结果与分析 | 第52-61页 |
| 3.2.1 转基因番茄的获得及鉴定 | 第52-53页 |
| 3.2.2 转基因番茄的表型观察 | 第53-59页 |
| 3.2.3 Sly-miR403超表达植株中相关基因的表达 | 第59-61页 |
| 3.3 讨论 | 第61-65页 |
| 3.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 4 结论与展望 | 第66-72页 |
| 4.1 结论 | 第66页 |
| 4.2 后续研究工作展望 | 第66-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-82页 |
| 附录 | 第82-87页 |
| A. 作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第82页 |
| B. 作者在攻读博士学位期间参加的科研项目 | 第82-83页 |
| C. 番茄潜在miR403的数字表达分析 | 第83-87页 |
