| 中文摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-13页 |
| 符号说明 | 第14-16页 |
| 第一章 前言 | 第16-37页 |
| 1. 动脉粥样硬化病理学 | 第16-19页 |
| 1.1 动脉粥样硬化病灶的病理性改变 | 第16-18页 |
| 1.2 动脉粥样硬化发病因素 | 第18-19页 |
| 2. 炎症与动脉粥样硬化 | 第19-22页 |
| 2.1 概述 | 第19-20页 |
| 2.2 参与AS病变形成的炎症介质 | 第20-22页 |
| 3. 免疫反应与动脉粥样硬化 | 第22-23页 |
| 4. 氧化压力与动脉粥样硬化 | 第23-25页 |
| 4.1 AS氧化学说 | 第24页 |
| 4.2 NO与心血管的关系 | 第24-25页 |
| 5. 血管平滑肌细胞与动脉粥样硬化 | 第25-28页 |
| 5.1 VSMCs参与AS的形成 | 第25页 |
| 5.2 VSMC在动脉粥样硬化过程中的作用 | 第25-28页 |
| 6. 动脉粥样硬化中的粘附分子 | 第28-29页 |
| 6.1 单核细胞被招募进入动脉血管壁 | 第28-29页 |
| 6.2 与动脉粥样硬化形成相关的粘附分子 | 第29页 |
| 7. 核因子(NF-κB)、TLR-MAPK与动脉粥样硬化 | 第29-33页 |
| 7.1 核因子(NF-κB)与动脉粥样硬化 | 第29-31页 |
| 7.2 TLR-MAPK与动脉粥样硬化 | 第31-33页 |
| 8. 中药水蛭抗动脉粥样硬化研究进展 | 第33-35页 |
| 8.1 中药水蛭 | 第33-34页 |
| 8.2 水蛭的药理作用 | 第34-35页 |
| 8.2.1 对血液系统的影响 | 第34页 |
| 8.2.2 对心血管系统的影响 | 第34页 |
| 8.2.3 水蛭酶解提取物对AS病灶细胞的作用 | 第34-35页 |
| 9. 本课题的研究目的、实验思路、创新点及意义 | 第35-37页 |
| 9.1 研究目的 | 第35页 |
| 9.2 实验思路 | 第35-36页 |
| 9.3 创新点及意义 | 第36-37页 |
| 第二章 大鼠VSMCs分离、培养、鉴定及细胞炎症模型的建立 | 第37-45页 |
| 1. 试剂和器材 | 第38页 |
| 1.1 实验材料 | 第38页 |
| 1.2 试剂 | 第38页 |
| 1.3 器材 | 第38页 |
| 2. 操作方法 | 第38-41页 |
| 2.1 大鼠VSMCs的提取、培养 | 第38-39页 |
| 2.2 大鼠VSMCs的鉴定 | 第39页 |
| 2.3 RT-PCR法评价VSMCs炎症模型的建立 | 第39-41页 |
| 3. 实验结果 | 第41-43页 |
| 3.1 大鼠VSMCs的分离、培养、鉴定 | 第41-42页 |
| 3.2 大鼠血管平滑肌细胞炎症模型的建立 | 第42-43页 |
| 4. 讨论 | 第43-44页 |
| 5. 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 HEE对大鼠VSMCs增殖率/迁移率的影响 | 第45-52页 |
| 1. 试剂和器材 | 第45-46页 |
| 1.1 实验材料 | 第45-46页 |
| 1.2 试剂 | 第46页 |
| 1.3 器材 | 第46页 |
| 2. 操作方法 | 第46-47页 |
| 2.1 MTT实验检测HEE对大鼠VSMCs增殖率的影响 | 第46页 |
| 2.2 划痕实验检测HEE对大鼠VSMCs迁移率的影响 | 第46-47页 |
| 2.3 TRANSWELL小室检测HEE对大鼠VSMCs迁移率的影响 | 第47页 |
| 3. 实验结果 | 第47-49页 |
| 3.1 HEE对大鼠VSMCs增殖率的影响 | 第47-48页 |
| 3.2 划痕实验检测水蛭酶解提取物对大鼠VSMCs迁移率的影响 | 第48页 |
| 3.3 TRANSWELL小室检测HEE对大鼠VSMCs迁移率的影响 | 第48-49页 |
| 4. 讨论 | 第49-51页 |
| 5. 本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 HEE减弱VSMCs对THP-1、RAW264.7的趋化/粘附 | 第52-60页 |
| 1. 试剂和器材 | 第53页 |
| 1.1 实验材料 | 第53页 |
| 1.2 试剂 | 第53页 |
| 1.3 器材 | 第53页 |
| 2. 实验方法 | 第53-55页 |
| 2.1 HEE减弱LPS诱导的VSMCs对THP-1、RAW264.7的趋化作用 | 第53-54页 |
| 2.2 HEE减弱LPS诱导的VSMCs对THP-1、RAW264.7的粘附作用 | 第54-55页 |
| 3. 实验结果 | 第55-58页 |
| 3.1 HEE减弱LPS诱导的VSMCs对THP-1、RAW264.7的趋化作用 | 第55页 |
| 3.2 HEE减弱LPS诱导的VSMCs对THP-1、RAW264.7的粘附作用 | 第55-58页 |
| 4. 讨论 | 第58页 |
| 5. 本章小结 | 第58-60页 |
| 第五章 HEE对VSMCs趋化因子/粘附分子表达的影响 | 第60-67页 |
| 1. 试剂和器材 | 第61页 |
| 1.1 实验材料 | 第61页 |
| 1.2 试剂 | 第61页 |
| 1.3 器材 | 第61页 |
| 2. 实验方法 | 第61-63页 |
| 2.1 HEE对VSMCs趋化因子/粘附分子基因转录水平的影响 | 第61页 |
| 2.2 HEE对VSMCs趋化因子/粘附分子蛋白表达水平的影响 | 第61-63页 |
| 3. 实验结果 | 第63-65页 |
| 3.1 HEE对VSMCs趋化因子/粘附分子基因转录水平的影响 | 第63页 |
| 3.2 HEE对VSMCs趋化因子/粘附分子蛋白表达水平的影响 | 第63-65页 |
| 4. 讨论 | 第65-66页 |
| 5. 本章小结 | 第66-67页 |
| 第六章 HEE抗VSMCs迁移/粘附的信号通路研究 | 第67-75页 |
| 1. 试剂和器材 | 第68-69页 |
| 1.1 实验材料 | 第68页 |
| 1.2 试剂 | 第68-69页 |
| 1.3 器材 | 第69页 |
| 2. 实验方法 | 第69-70页 |
| 2.1 HEE抑制VSMCs的NF-κB核移位 | 第69页 |
| 2.2 MAPK及NF-κB抑制剂对炎症因子、粘附分子、趋化因子表达的影响 | 第69-70页 |
| 2.3 HEE抗VSMCs迁移/粘附值号通路研究 | 第70页 |
| 3. 实验结果 | 第70-72页 |
| 3.1 HEE抑制VSMCs的NF-κB核移位 | 第70页 |
| 3.2 MAPK及NF-κB抑制剂对炎症因子、粘附分子、趋化因子蛋白表达的影响 | 第70-72页 |
| 3.3 HEE抗VSMCs迁移/粘附信号通路研究 | 第72页 |
| 4. 讨论 | 第72-74页 |
| 5. 本章小结 | 第74-75页 |
| 全文总结 | 第75-76页 |
| 附录 | 第76-82页 |
| 附录1：细胞培养常用试剂的配制方法 | 第76-77页 |
| 附录2：PCR常用试剂配制方法 | 第77页 |
| 附录3：WESTERN常用试剂配制方法 | 第77-79页 |
| 附录4：部分试剂、仪器生产商 | 第79-82页 |
| 参考文献 | 第82-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 已发表文章目录 | 第87-88页 |
| 附件 | 第88页 |
