| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-16页 |
| 前言 | 第16-19页 |
| 研究现状、成果 | 第16-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-19页 |
| 一、间歇低氧对大鼠循环血淋巴细胞亚群凋亡的研究 | 第19-38页 |
| 1.1 实验材料及方法 | 第19-25页 |
| 1.1.1 不同暴露时间间歇低氧气体模型的建立 | 第19-22页 |
| 1.1.2 实验标本的处理 | 第22-23页 |
| 1.1.3 流式细胞学检测淋巴细胞亚群凋亡 | 第23-24页 |
| 1.1.4 统计学处理 | 第24-25页 |
| 1.2 结果 | 第25-34页 |
| 1.2.1 大鼠CD4细胞凋亡 | 第25-27页 |
| 1.2.2 大鼠CD8细胞凋亡率 | 第27-29页 |
| 1.2.3 大鼠NK细胞凋亡 | 第29-31页 |
| 1.2.4 大鼠B细胞凋亡 | 第31-34页 |
| 1.3 讨论 | 第34-37页 |
| 1.4 第一部分小结 | 第37-38页 |
| 二、间歇低氧对大鼠淋巴细胞与血管内皮细胞相互作用的研究 | 第38-100页 |
| 2.1 材料和方法 | 第40-55页 |
| 2.1.1 大鼠间歇低氧血淋巴细胞的获取 | 第40-42页 |
| 2.1.2 大鼠主动脉内皮细胞制备 | 第42-43页 |
| 2.1.3. 大鼠淋巴细胞与内皮细胞共培养及分组 | 第43页 |
| 2.1.4 标本留取 | 第43页 |
| 2.1.5 IH暴露及抗氧化干预大鼠淋巴细胞与血管内皮细胞共培养液中炎性因子及氧化应激指标测定 | 第43-45页 |
| 2.1.6 IH暴露及抗氧化干预大鼠淋巴细胞与血管内皮细胞共培养血管内皮细胞内NF-κB P65、Caspase-3、BAX、BCL-2蛋白水平的测定 | 第45-52页 |
| 2.1.7 IH暴露及抗氧化干预大鼠淋巴细胞与血管内皮细胞内皮细胞内MAPK P38、NAPDH P22、HIF-1α、C-FOS mRNA表达水平的定量分析 | 第52-55页 |
| 2.1.8 统计学处理 | 第55页 |
| 2.2 结果 | 第55-84页 |
| 2.2.1 IH暴露及抗氧化干预大鼠淋巴细胞与血管内皮细胞共培养液中炎性细胞因子表达 | 第56-62页 |
| 2.2.2 IH暴露及抗氧化干预大鼠淋巴细胞与血管内皮细胞共培养液中上清液中氧化指标变化 | 第62-66页 |
| 2.2.3 IH暴露及抗氧化干预大鼠淋巴细胞与血管内皮细胞共培养内皮细胞内NF-κB P65、Caspase-3、Bcl-2、Bax蛋白水平 | 第66-75页 |
| 2.2.4 IH暴露及抗氧化干预大鼠淋巴细胞与血管内皮细胞共培养内皮细胞内C-FOS、mRNA表达水平 | 第75-77页 |
| 2.2.5 IH暴露及抗氧化干预大鼠淋巴细胞与血管内皮细胞共培养内皮细胞内HIF-1α-mRNA表达水平 | 第77-79页 |
| 2.2.6 IH暴露及抗氧化干预大鼠淋巴细胞与血管内皮细胞共培养内皮细胞内MAPK P38 mRNA表达水平 | 第79-84页 |
| 2.3 讨论 | 第84-99页 |
| 2.3.1 淋巴细胞 | 第86页 |
| 2.3.2 内皮细胞 | 第86-87页 |
| 2.3.3 信号通路 | 第87-94页 |
| 2.3.4 炎性因子及反应性活性氧 | 第94-98页 |
| 2.3.5 内皮细胞凋亡 | 第98-99页 |
| 2.4 第二部分小结 | 第99-100页 |
| 全文结论 | 第100-101页 |
| 论文创新点 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-115页 |
| 综述 OSAS中淋巴细胞亚群参与动脉粥样硬化研究进展 | 第115-130页 |
| 综述参考文献 | 第121-130页 |
| 致谢 | 第130页 |
