| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 符号说明 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 研究现状、成果 | 第14-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-17页 |
| 一、Th1/Th2型细胞因子对MCF-7 细胞生长特性的影响 | 第17-29页 |
| 1.1 对象和方法 | 第17-23页 |
| 1.1.1 细胞系 | 第17页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第17-18页 |
| 1.1.3 主要仪器和设备 | 第18页 |
| 1.1.4 主要试剂的配制 | 第18-19页 |
| 1.1.5 细胞培养 | 第19页 |
| 1.1.6 MTT法检测细胞增殖特性 | 第19页 |
| 1.1.7 流式分析细胞周期分布 | 第19-20页 |
| 1.1.8 RT-PCR法检测凋亡抑制基因表达情况 | 第20-23页 |
| 1.1.9 统计学处理 | 第23页 |
| 1.2 结果 | 第23-26页 |
| 1.2.1 建立体外细胞培养时的Th1或Th2优势状态 | 第23-24页 |
| 1.2.2 Th1/Th2型细胞因子对细胞周期分布的影响 | 第24-25页 |
| 1.2.3 Th1/Th2型细胞因子对凋亡抑制基因表达的影响 | 第25-26页 |
| 1.3 讨论 | 第26-28页 |
| 1.4 小结 | 第28-29页 |
| 二、Th1/Th2型细胞因子对MCF-7 细胞成瘤、侵袭和转移能力的影响 | 第29-42页 |
| 2.1 对象和方法 | 第29-34页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第29页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第29页 |
| 2.1.3 主要仪器和设备 | 第29-30页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第30-31页 |
| 2.1.5 软琼脂集落形成实验检测的细胞体外成瘤能力 | 第31-32页 |
| 2.1.6 基质胶黏附实验检测细胞的体外黏附能力 | 第32页 |
| 2.1.7 Western blot技术检测细胞蛋白表达水平 | 第32-34页 |
| 2.1.8 RT-PCR技术检测细胞mRNA表达水平 | 第34页 |
| 2.1.9 统计学处理 | 第34页 |
| 2.2 结果 | 第34-39页 |
| 2.2.1 Th1/Th2型细胞因子对细胞体外成瘤能力的影响 | 第34-35页 |
| 2.2.2 Th1/Th2型细胞因子对细胞黏附能力的影响 | 第35-36页 |
| 2.2.3 Th1/Th2型细胞因子对细胞VEGF表达水平的影响 | 第36-37页 |
| 2.2.4 Th1/Th2型细胞因子对细胞MMP-2 和MMP-9 表达水平的影响 | 第37-38页 |
| 2.2.5 Th1/Th2型细胞因子对细胞Akt和Erk的磷酸化水平的影响 | 第38-39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-41页 |
| 2.4 小结 | 第41-42页 |
| 三、Th1/Th2型细胞因子对MCF-7 细胞ER表达的影响 | 第42-49页 |
| 3.1 对象和方法 | 第42-44页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第42页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第42页 |
| 3.1.3 主要仪器和设备 | 第42页 |
| 3.1.4 主要试剂的配制 | 第42-43页 |
| 3.1.5 细胞培养及上清的获取 | 第43页 |
| 3.1.6 ELISA实验检测Th1/Th2型细胞因子 | 第43-44页 |
| 3.1.7 RT-PCR检测细胞ER的mRNA表达水平 | 第44页 |
| 3.1.8 Western blot技术检测细胞ER的蛋白表达水平 | 第44页 |
| 3.1.9 统计学处理 | 第44页 |
| 3.2 结果 | 第44-46页 |
| 3.2.1 Th1/Th2型细胞因子对细胞的ER表达水平的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.2 MCF-7 细胞自分泌水平的IFN-γ 和IL-4 对自身ER表达水平的影响 | 第45-46页 |
| 3.3 讨论 | 第46-48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 结论 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-57页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第57-58页 |
| 综述 Th1/Th2平衡与肿瘤发生的研究进展 | 第58-71页 |
| 综述参考文献 | 第63-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
