| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-33页 |
| 1.1 种植体骨整合 | 第13-17页 |
| 1.1.1 骨的组织结构特征及创伤愈合机制 | 第14-15页 |
| 1.1.2 种植体骨整合机制 | 第15-17页 |
| 1.2 种植体表面特征 | 第17-23页 |
| 1.2.1 表面形貌 | 第19-22页 |
| 1.2.2 化学成分 | 第22页 |
| 1.2.3 物理性质 | 第22-23页 |
| 1.2.4 力学性质 | 第23页 |
| 1.3 种植体表面涂层技术 | 第23-29页 |
| 1.3.1 无机涂层 | 第24-25页 |
| 1.3.2 有机涂层 | 第25-27页 |
| 1.3.3 涂层技术 | 第27-29页 |
| 1.4 论文选题及研究内容 | 第29-33页 |
| 1.4.1 选题思路 | 第29-30页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第30-33页 |
| 第二章 TiO_2纳米管表面原位形成纳米羟基磷灰石的制备和性能表征 | 第33-53页 |
| 2.1 材料与方法 | 第33-37页 |
| 2.1.1 实验材料与仪器 | 第33-34页 |
| 2.1.2 表面涂层制备 | 第34-35页 |
| 2.1.3 材料表征 | 第35-36页 |
| 2.1.4 建立纳米压痕有限元模型 | 第36-37页 |
| 2.2 结果 | 第37-46页 |
| 2.2.1 表面形貌观察 | 第37-41页 |
| 2.2.2 表面粗糙度及亲疏水性 | 第41-42页 |
| 2.2.3 膜结合强度 | 第42-44页 |
| 2.2.4 表面力学性质 | 第44-45页 |
| 2.2.5 有限元仿真结果分析 | 第45-46页 |
| 2.3. 讨论 | 第46-51页 |
| 2.3.1 TiO_2纳米管形成机理 | 第46-47页 |
| 2.3.2 TiO_2纳米管表面n HA形成机理 | 第47页 |
| 2.3.3 纯Ti表面涂层对表面性能的影响 | 第47-50页 |
| 2.3.4 nHA/TiO_2/Ti的生物学意义 | 第50-51页 |
| 2.4 小结 | 第51-53页 |
| 第三章 TiO_2纳米管表面原位形成纳米羟基磷灰石的细胞响应 | 第53-83页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第53-55页 |
| 3.1.1 主要实验材料与试剂 | 第53-54页 |
| 3.1.2 主要实验仪器 | 第54-55页 |
| 3.1.3 主要试剂的配制 | 第55页 |
| 3.2 实验方法 | 第55-61页 |
| 3.2.1 试件准备 | 第55-56页 |
| 3.2.2 MC3T3-E1细胞培养 | 第56页 |
| 3.2.3 细胞早期形态学检测 | 第56-57页 |
| 3.2.4 细胞增殖活性检测 | 第57页 |
| 3.2.5 细胞分化检测 | 第57-58页 |
| 3.2.6 胶原分泌检测 | 第58页 |
| 3.2.7 细胞矿化能力 | 第58-59页 |
| 3.2.8 实时荧光定量PCR | 第59-61页 |
| 3.2.9 统计学分析 | 第61页 |
| 3.3 结果 | 第61-75页 |
| 3.3.1 不同表面处理对细胞早期形态的影响 | 第62-69页 |
| 3.3.2 不同表面处理对细胞增殖活性的影响 | 第69-70页 |
| 3.3.3 不同表面处理对ALP活性的影响 | 第70-71页 |
| 3.3.4 不同表面处理对胶原分泌的影响 | 第71-72页 |
| 3.3.5 不同表面处理对矿化结节形成的影响 | 第72-73页 |
| 3.3.6 不同表面处理对基因表达的影响 | 第73-75页 |
| 3.4 讨论 | 第75-80页 |
| 3.4.1 细胞选择 | 第75页 |
| 3.4.2 材料表面对成骨细胞早期粘附的影响 | 第75-76页 |
| 3.4.3 材料表面对成骨细胞铺展形态的影响 | 第76-77页 |
| 3.4.4 材料表面对成骨细胞增殖活性的影响 | 第77-78页 |
| 3.4.5 材料表面对成骨细胞分化的影响 | 第78页 |
| 3.4.6 材料表面对细胞外基质形成和矿化的影响 | 第78页 |
| 3.4.7 材料表面对成骨相关基因表达的影响 | 第78-80页 |
| 3.5 小结 | 第80-83页 |
| 第四章 TiO_2纳米管表面原位形成纳米羟基磷灰石在体骨整合的实验研究 | 第83-109页 |
| 4.1 材料与设备 | 第83-84页 |
| 4.1.1 植入材料 | 第83-84页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第84页 |
| 4.1.3 实验设备 | 第84页 |
| 4.1.4 实验试剂 | 第84页 |
| 4.2 实验方法 | 第84-89页 |
| 4.2.1 动物手术及取材 | 第84-87页 |
| 4.2.2 硬组织切片观察 | 第87-88页 |
| 4.2.3 Micro CT观察 | 第88页 |
| 4.2.4 推出力测试 | 第88页 |
| 4.2.5 计算矫正剪切强度 | 第88-89页 |
| 4.2.6 统计分析 | 第89页 |
| 4.3 结果 | 第89-98页 |
| 4.3.1 硬组织切片观察 | 第89-94页 |
| 4.3.2 Micro CT扫描 | 第94-96页 |
| 4.3.3 推出力试验 | 第96-97页 |
| 4.3.4 计算矫正剪切强度 | 第97-98页 |
| 4.4 讨论 | 第98-107页 |
| 4.4.1 实验动物的选择和方案设计 | 第99-100页 |
| 4.4.2 硬组织切片观察 | 第100-101页 |
| 4.4.3 Micro CT检测 | 第101-102页 |
| 4.4.4 种植体骨整合的功能评价 | 第102-103页 |
| 4.4.5 种植体界面剪切强度 | 第103页 |
| 4.4.6 HA在种植体骨整合中的生物学作用 | 第103-105页 |
| 4.4.7 nHA/TiO_2/Ti促进早期骨整合 | 第105-107页 |
| 4.5 小结 | 第107-109页 |
| 第五章 全文总结与展望 | 第109-111页 |
| 5.1 全文总结 | 第109页 |
| 5.2 展望 | 第109-111页 |
| 参考文献 | 第111-121页 |
| 致谢 | 第121-123页 |
| 攻读博士期间的主要研究成果 | 第123-125页 |
| 博士学位论文独创性声明 | 第125页 |
