摘要 | 第4-7页 |
ABSTRACT | 第7-10页 |
第一章 前言 | 第14-25页 |
1 国内外对废用性肌肉萎缩的研究进展 | 第14-21页 |
1.1 实验动物模型——废用性肌萎缩 | 第14-15页 |
1.2 判定方法——废用性肌萎缩 | 第15页 |
1.3 骨骼肌形态、结构、功能的变化——废用状态下 | 第15-16页 |
1.4 发生机制——废用性肌萎缩 | 第16-21页 |
1.5 防治方法——废用性肌萎缩 | 第21页 |
2 国内外对冬眠对抗废用性肌萎缩的研究进展 | 第21-23页 |
2.1 骨骼肌形态、结构、功能的变化——冬眠状态下 | 第22-23页 |
2.2 骨骼肌蛋白质代谢的变化——冬眠状态下 | 第23页 |
3 本研究的目的和意义 | 第23-25页 |
第二章 后肢去负荷大鼠骨骼肌MAFBX MRNA、MURF1 MRNA和MYF-5 MRNA的表达及川芎嗪的影响 | 第25-42页 |
2.1 前言 | 第25-26页 |
2.2 材料与方法 | 第26-31页 |
2.2.1 实验动物及分组 | 第26-27页 |
2.2.2 实验动物模型的建立 | 第27页 |
2.2.3 药品制备及给药方式 | 第27页 |
2.2.4 主要仪器和试剂 | 第27-28页 |
2.2.5 实时定量PCR方法 | 第28-31页 |
2.2.6 统计分析 | 第31页 |
2.3 实验结果 | 第31-39页 |
2.3.1 检测Real Time PCR引物的特异性以及退火温度 | 第31-33页 |
2.3.2 Real Time PCR反应质量鉴定 | 第33页 |
2.3.3 不同组大鼠MAFbx、MuRF1和Myf-5mRNA表达水平的测定结果 | 第33-39页 |
2.4 讨论 | 第39-42页 |
2.4.1 后肢去负荷对大鼠比目鱼肌MAFbx、MuRF1和Myf-5mRNA表达水平的影响 | 第39-40页 |
2.4.2 后肢去负荷对大鼠趾长伸肌MAFbx、MuRF1和Myf-5 mRNA表达水平的影响 | 第40-42页 |
第三章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠骨骼肌MAFBX MRNA、MURF1 MRNA和MYF-5MRNA表达的变化 | 第42-57页 |
3.1 前言 | 第42-43页 |
3.2 材料与方法 | 第43-48页 |
3.2.1 实验动物及分组 | 第43页 |
3.2.2 主要仪器和试剂 | 第43-44页 |
3.2.3 肌肉样品的制备 | 第44-45页 |
3.2.4 实时定量PCR方法 | 第45-48页 |
3.2.5 统计分析 | 第48页 |
3.3 实验结果 | 第48-55页 |
3.3.1 实时定量PCR引物的特异性以及退火温度的检测 | 第48页 |
3.3.2 Real Time PCR反应质量鉴定 | 第48-49页 |
3.3.3 冬眠不同时期黄鼠MAFbx、MuRF1和Myf-5mRNA表达水平的测定结果 | 第49-55页 |
3.4 讨论 | 第55-57页 |
3.4.1 冬眠对达乌尔黄鼠比目鱼肌MAFbx、MuRF1和Myf-5mRNA的表达水平的影响 | 第55-56页 |
3.4.2 冬眠对达乌尔黄鼠趾长伸肌MAFbx、MuRF1和Myf-5mRNA的表达水平的影响 | 第56-57页 |
第四章 冬眠不同时期达乌尔黄鼠骨骼肌MAFBX、MURF1和MYF-5蛋白表达量的变化 | 第57-68页 |
4.1 前言 | 第57页 |
4.2 材料与方法 | 第57-62页 |
4.2.1 实验动物和分组 | 第57-58页 |
4.2.2 实验仪器设备 | 第58页 |
4.2.3 主要试剂和常用溶液的配制 | 第58-60页 |
4.2.4 主要抗体 | 第60页 |
4.2.5 实验操作 | 第60-62页 |
4.2.6 统计学分析方法 | 第62页 |
4.3 实验结果 | 第62-66页 |
4.3.1 冬眠不同时期对黄鼠比目鱼肌MAFbx和Myf-5的蛋白表达量的影响 | 第62-64页 |
4.3.2 冬眠不同时期对黄鼠趾长伸肌MAFbx和Myf-5的蛋白表达量的影响 | 第64-66页 |
4.4 讨论 | 第66-68页 |
4.4.1 冬眠对达乌尔黄鼠比目鱼肌MaFbx和Myf-5的蛋白表达量的影响 | 第66页 |
4.4.2 冬眠对达乌尔黄鼠趾长伸肌MaFbx和Myf-5的蛋白表达量的影响 | 第66-68页 |
结论与创新点 | 第68-69页 |
不足及展望 | 第69-70页 |
参考文献 | 第70-79页 |
附录 | 第79-80页 |
攻读硕士期间取得的科研成果 | 第80-81页 |
致谢 | 第81页 |